• 틸만 D.
• 클라크 M.

글로벌 다이어트는 환경 지속 가능성과 인간 건강을 연결합니다.

자연. 2014; 515: 518-522

• 고드프레이 HCJ
• et al.

육류 소비, 건강 및 환경.

과학. 2018; 361: eam5324

• 리치 H.
• 로저 M.

식품 생산의 환경적 영향.

우리의 세계 데이터, 2020

• 리치 H.
• et al.

육류 및 유제품 생산.

우리의 세계 데이터, 2017

식물성 육류 유사체: 틈새 시장에서 주류로.

유로. 식품 해상도 기술. 2021; 247: 297-308

• 루비오 NR
• et al.

조작된 곤충 조직을 식품 공급원으로 사용할 수 있는 가능성.

앞. 지속시키다. 식품시스템 2019; 3: 24

• 하솀푸르-발토크 F.
• et al.

안전한 육류 대용품으로서 마이코프로테인.

J. 클린. 찌르다. 2020; 253119958

• 팔라히 A.
• et al.

골격근 모델 엔지니어링을 위한 맞춤형 복합 섬유.

ACS 바이오 매터. 공상 과학 영어 2020; 6: 1112-1123

• 모스타파비 A.
• et al.

콜로이드 멀티스케일 다공성 접착제(바이오) 잉크는 스캐폴드 통합을 용이하게 합니다.

Appl. Phys. 신부님. 2021; 8041415

• 첸 L.
• et al.

대규모 배양육 생산: 동향, 과제 및 유망한 생물제조 기술.

생체재료. 2022; 280121274

• 루비오 NR
• et al.

육류 생산에 대한 식물 기반 및 세포 기반 접근법.

Nat. 코뮌. 2020; 11: 6276

• 싱케 P.
• et al.

2030년 상업적 규모의 재배 육류 생산에 대한 사전 수명 주기 평가.

국제 J. 라이프 사이클 평가. 2023; 28: 234-254

• 스톨-클리만 S.
• 오리어던 T.

육류 및 유제품 식단의 지속 가능성 문제.

환경. 과학. 정책 유지. 데브. 2015; 57: 34-48

• 보니 SPF
• et al.

인공고기는 무엇이고 육류 산업의 미래에 어떤 의미가 있을까요?.

J. 통합. 농업. 2015; 14: 255-263

• 포스트 MJ
• et al.

배양육의 과학적, 지속 가능성 및 규제 문제.

Nat. 음식. 2020; 1: 403-415

• 봄캠프 C.
• et al.

3D 재배 육류용 비계 생체 재료: 전망과 과제.

Adv. 공상 과학 2022; 9: 2102908

• 팍세레스트 A.
• et al.

배양육에 대한 소비자 수용에 영향을 미치는 요인 검토.

식욕. 2022; 170105829

• 관X.
• et al.

근육줄기세포의 바이오프로세싱 기술: 배양육에 대한 시사점.

트렌드 바이오테크놀러지. 2022; 40: 721-734

• 사만다리 M.
• et al.

연질 근골격 조직 공학을 위한 3D 프린팅.

에서: 첸 Y. 근골격 조직 공학. Elsevier, 2022: 167-200

• 사만다리 M.
• et al.

In situ bioprinting: 재생 의학의 수술 중 구현.

트렌드 바이오테크놀러지. 2022; 40: 1229-1247

• 버거 R.
• et al.

재배육 TEA. 다양한 시나리오에 대한 향후 계획.

CE 델프트, 2021

• 리스너 D.
• et al.

동물 세포 기반 고기의 예비 기술 경제적 평가.

식품. 2021; 10: 3

재배육의 배지비용과 생산량 분석.

좋은 식품 연구소, 2020

• 장 엠.
• et al.

C2C12 세포의 무혈청 배양은 대사 프로파일링으로 추정할 수 있는 다양한 근육 표현형을 보여줍니다.

Sci. 대표. 2022; 12: 827

• 리스트랏 A.
• et al.

근육 구조와 구성이 고기와 육질의 품질에 미치는 영향.

공상 과학 세계 J. 2016; 2016: 3182746

• 볼리오티 YS
• et al.

소 배반포로부터 안정한 프라이밍된 다능성 배아 줄기 세포의 효율적인 유도.

Proc. Natl. Acad. Sci. 미국 2018; 115: 2090-2095

• 소토 다
• et al.

배양 조건의 단순화 및 소 배아 줄기 세포의 피더 없는 확장.

Sci. 대표. 2021; 11: 11045

• 키노시타 M.
• et al.

배아 디스크와 관련된 만능 줄기 세포는 다양한 가축 종에서 공통적인 자가 재생 요구 사항을 나타냅니다.

개발. 2021; 148: dev199901

• 그는 S.
• et al.

모델 제브라피시 세포주의 유전 및 전사체 특성화.

제브라피쉬. 2006; 3: 441-453

• 부오노코어 F.
• et al.

농어로부터 연속 배아 세포주의 생산 및 특성 규명(디센트라쿠스 라브락스 엘.).

XNUMX월 바이오테크놀러지. 2006; 8: 80-85

• 자 BS
• et al.

자가 유도 만능 줄기 세포 기반 치료제에 대한 임상 XNUMX상 신약 신청을 개발하기 위한 규제 고려 사항.

줄기세포 번역 메드. 2021; 10: 198-208

• 로셀로 RA
• et al.

포유동물 유전자는 비포유류 척추동물 및 무척추동물 종에서 부분적으로 재프로그래밍된 다능성 줄기 세포를 유도합니다.

eLife. 2013; 2e00036

• 수 Y.
• et al.

소 유도 만능 줄기 세포의 확립.

Int. J. Mol. Sci. 2021; 22: 10489

• 에자시 T.
• et al.

돼지 체세포로부터 유도만능줄기세포의 유도.

Proc. Natl. Acad. Sci. 미국 2009; 106: 10993-10998

• E. 쿠이크
• et al.

인간 만능 및 성체 줄기 세포 배양의 돌연변이 영향.

Nat. 코뮌. 2020; 11: 2493

• 리 X.
• et al.

COL8A1이 근육 유래 위성 세포의 증식에 미치는 영향.

세포 바이오. 국제 2018; 42: 1132-1140

• 딩 S.
• et al.

p38 경로를 통해 소 위성 세포 줄기를 유지합니다.

Sci. 대표. 2018; 8: 1-12

• 매스넷 J.
• et al.

근이영양증 환자와 건강한 개인으로부터 불멸화된 인간 근육 위성 세포 클론의 파생 및 특성화.

세포. 2020; 9: 1780

• 라부이 C.
• 알베르티 S.

스트레스에 따른 세포 적응: 막이 없는 구획의 새로운 역할.

커 의견. 세포 바이오. 2017; 47: 34-42

• 심사 R.
• et al.

세포외 헴 단백질은 소의 근위수체 세포 증식과 세포 기반 고기의 색상에 영향을 미칩니다.

식품. 2019; 8: 521

• 메스머 T.
• et al.

배양육 생산을 위한 무혈청 배지 제형은 혈청 고갈이 없는 소의 위성 세포 분화를 지원합니다.

Nat. 음식. 2022; 3: 74-85

• 퀴로가-캄파노 AL
• et al.

생물제조 최적화를 위한 에너지 기반 배양 배지 설계: GS-NS0 세포에 의한 단클론 항체 생산 사례 연구.

메타브. 영어 2018; 47: 21-30

• 서머레거 W.
• et al.

제어에 의한 품질: 포유류 세포 배양 생물공정의 모델 예측 제어를 향하여.

생명공학. 제이. 2017; 12: 1600546

• 로돌피 L.
• et al.

성장 배지 재활용 난노 클로 로프 시스 sp. 대량 재배.

바이오몰. 영어 2003; 20: 243-248

• 주 C.
• et al.

재활용 문화 네오클로리스 올레오아분단스 자동 응집에 의한 수확과 함께 중탄산염 기반 통합 탄소 포집 및 조류 생산 시스템에서.

생명공학. 바이오 연료. 2018; 11: 204

• 장소 ES
• et al.

조직 공학을 위한 생체 재료의 복잡성.

Nat. 교인. 2009; 8: 457-470

• 안나비 N.
• et al.

25주년 기념 기사: 재생 의학에서 하이드로겔의 합리적 설계 및 응용.

Adv. 교인. 2014; 26: 85-124

• 퀴 BJ
• 무니 DJ

골격근 조직 공학을 위한 생체 재료.

커 의견. 생명공학. 2017; 47: 16-22

• 응 S.
• 쿠리사와 M.

배양육 생산을 위한 생체 재료와 식품 생체 고분자의 통합.

액타 바이오마터. 2021; 124: 108-129

• 존스 JD
• et al.

탈세포화된 시금치: 실험실에서 기른 고기를 위한 식용 비계.

식품생명과학. 2021; 41100986

• 캄푸자노 S.
• et al.

myoblast 세포의 유도 정렬을 위한 Decellularized 식물 기반 스캐폴드.

바이오Rxiv. 2020; ()

• 앨런 SJ
• et al.

골격근 조직 공학을 위한 지속 가능한 스캐폴드로서의 Decellularized 잔디.

J. 바이오메드. 메이터. 해상도 NS. 2021; 109: 2471-2482

• 쳉 Y.-W.
• et al.

탈세 포화 식물 유래 스캐 폴드를 사용하여 골격근 조직을 엔지니어링합니다.

ACS 바이오 매터. 공상 과학 영어 2020; 6: 3046-3054

• 시앙 N.
• et al.

재배 육류 생산을 위한 식용 필름.

생체재료. 2022; 287121659

• 립친 MS
• et al.

세포 기반 육류용 바이오스캐폴드인 Nata de Coco의 나노셀룰로오스.

ACS 오메가. 2021; 6: 33923-33931

• 마르케스 DMC
• et al.

새로운 κ-카라기난 바이오잉크의 3D 바이오프린팅: 조류 유래 다당류.

생명 공학. 2022; 9: 109

• 수 엘.
• et al.

세포 기반 육류 배양을 위한 3D 프린팅된 프롤라민 스캐폴드.

Adv. 교인. 2023; 35: 2207397

• 정 Y.-Y.
• et al.

돼지 평활근 세포를 식품 등급 땅콩 와이어 드로잉 단백질 스캐폴드로 체외 배양하여 배양육 생산.

식품 해상도 국제 2022; 159111561

• 홈즈 JT
• et al.

수제 빵: 체외 조직 공학을 위한 고대 기술의 용도 변경.

생체재료. 2022; 280121267

• 벤아리 T.
• et al.

질감이 있는 콩 단백질 지지체는 세포 기반 고기를 위한 XNUMX차원 소 골격근 조직의 생성을 가능하게 합니다.

Nat. 음식. 2020; 1: 210-220

• 시앙 N.
• et al.

배양육 응용 분야를 위한 밀 글루테닌의 3D 다공성 스캐폴드.

생체재료. 2022; 285121543

• Wollschlaeger JO
• et al.

식물성 단백질이 풍부한 다당류 하이드로겔을 기반으로 한 배양육용 발판.

젤. 2022; 8: 94

• 야노비치 I.
• et al.

재배 육류 개발을 위한 3D 인쇄 가능한 식물성 단백질 강화 스캐폴드.

생체재료. 2022; 284121487

• 휘트날 T.
• 피츠 N.

육류 소비의 세계적 추세.

농업. 상품. 2019; 9: 96-99

• 맥키 C.
• 초드리 GR

줄기 세포 배양의 발전과 도전.

콜로이드 서핑. B: 생체 인터페이스. 2017; 159: 62-77

• 보디우 V.
• et al.

배양육 생산을 확대하기 위한 마이크로캐리어.

앞. Nutr. 2020; 7: 10

• 사만다리 M.
• et al.

골격근 조직 공학을 위한 바이오잉크 및 바이오프린팅 전략.

Adv. 교인. 2022; 34: 2105883

• 러스크 JL
• 노우드 FB

채식주의의 경제적 이익과 비용.

농업. 리소스 절약 신부님. 2009; 38: 109-124

• 예 Y.
• et al.

배양육 제품의 상업화: 현재 상태, 과제 및 전략적 전망.

풋. 식품. 2022; 6100177

• 온위젠 MC
• et al.

콩류, 조류, 곤충, 식물성 육류 대체품 및 배양육과 같은 대체 단백질의 소비자 수용에 대한 체계적인 검토.

식욕. 2021; 159105058

• 사만다리 M.
• et al.

설계된 3D 미세 구획화를 통해 바이오프린팅에서 세포 조직을 제어합니다.

Appl. Phys. 신부님. 2021; 8021404

• 리우 Y.
• et al.

확장 가능한 골격근 세포 확장 및 다공성 젤라틴 마이크로 캐리어를 사용하는 모듈식 마이크로 조직 어셈블리를 통해 가공된 미트볼.

생체재료. 2022; 287121615

• N. 루비오
• et al.

세포 기반 어류: 해산물 생산에 대한 새로운 접근 방식과 세포 농업의 기회.

앞. 지속시키다. 식품시스템 2019; 3: 43

• 유로파 AF
• et al.

포유류 세포의 연속 배양에서 뚜렷한 세포 대사가 있는 다중 정상 상태.

생명공학. 바이오엔. 2000; 67: 25-34

• 험버드 D.

배양육을 위한 스케일업 경제학.

생명공학. 바이오엔. 2021; 118: 3239-3250

• 퀸트 JP
• et al.

골격근 조직 공학을 위한 나노 공학 근육 조직 스캐폴드.

나노스케일. 2022; 14: 797-814

• 하라구치 Y.
• et al.

포유류 세포와 조류를 결합한 '공생 재활용 시스템'의 두꺼운 XNUMX차원 조직.

Sci. 대표. 2017; 7: 41594

• 노박 R.
• et al.

여러 혈관 장기 칩의 로봇 유체 커플링 및 심문.

Nat. 생체. 영어 2020; 4: 407-420

• M. Utpott.
• et al.

Metabolomics: 식품 가공 평가를 위한 분석 기법.

식품화학 2022; 366130685

• 칸 미
• et al.

육류 풍미 전구체 및 풍미 전구체에 영향을 미치는 요인 - 체계적인 검토.

고기 과학. 2015; 110: 278-284

• 스미스 FE

서기 2030년의 세계

호더와 스토튼, 1930

• 매사추세츠 벤자민슨
• et al.

체외 식용 근육 단백질 생산 시스템(MPPS): 1단계, 생선.

액타 우주비행사. 2002; 51: 879-889

양식 쇠고기: 식품을 생산하는 의료 기술.

J. Sci. 식품 농업. 2014; 94: 1039-1041

• 스미스 디제이
• et al.

세포 농업을 사용한 식품 시스템의 변화: 앞으로 무엇이 놓여 있으며 누가 주도할 것인가?.

트렌드 식품 과학. 기술. 2022; 127: 368-376

• 히르트 라
• et al.

삶의 질이 조정된 XNUMX년 동안 지불할 용의: 표준을 찾아서.

중간 결정. 막. 2000; 20: 332-342

• 코작 GM
• et al.

복잡한 하지 재건의 비교 효과 분석: 생물학적 기반, 국소 조직 재배열 및 자유 플랩 재건의 결과 및 비용.

플라스틱. 재구성 수술 2020; 145: 608

• 맥켄지 EJ
• et al.

사지를 위협하는 부상의 절단 또는 재건과 관련된 의료 비용.

J. 뼈 관절 수술. 오전. 2007; 89: 1685-1692

• 코로나 BT
• et al.

체적 근육 손실은 사지 외상 후 영구적인 장애로 이어집니다.

J. 재활. 해상도 데브. 2015; 52: 785-792

• Culme-Seymour EJ
• et al.

영국의 줄기 세포 기반 조직 공학 기도 이식 비용: 사례 시리즈.

조직공학 NS. 2016; 22: 208-213

• 그라스만 JM
• et al.

골격근 손상에서 체적 근육 손실의 재생을 위한 생체모방 스캐폴드.

액타 바이오마터. 2015; 25: 2-15

• 알렉산드라토스 N.
• 브루인스마 J.

2030/2050을 향한 세계 농업: 2012 개정판.

AgEcon 검색, 2012

• Řı́hová B.

세포 전달 시스템의 면역적합성 및 생체적합성.

Adv. 약물 전달. 신부님. 2000; 42: 65-80

• 길버트-호닉 J.
• 그레이슨 W.

혈관화 및 신경분포된 골격근 조직 공학.

Adv. 건강 c. 교인. 2020; 9: 1900626

• 반 더 발크 J.
• et al.

태아 소 혈청(FBS): 과거-현재-미래.

알텍스. 2018; 35: 1-20

재현성: 세포를 존중하십시오!.

자연. 2016; 537: 433-435

• 랭거 R.
• 티렐 DA

생물학과 의학을 위한 재료를 설계합니다.

자연. 2004; 428: 487-492

• 이경Y.
• et al.

근육 세포 분화를 위한 시스템: 생명 공학에서 미래 식품까지.

마이크로머신. 2022; 13: 71

• 오버바이스 CV
• et al.

조직 기반 제품에 대한 규제 프레임워크에 대한 전 세계 개요.

조직공학 B 목사 2020; 26: 181-196

미국 보건복지부 식품의약청과 미국 농무부 식품안전국 간의 공식 계약.

USDA FSIS, 2019

• 맥퀸 LA
• et al.

섬유질 젤라틴의 근육 조직 공학: 육류 유사체에 대한 의미.

NPJ 과학. 음식. 2019; 3: 1-12

• 박 S.
• et al.

젤라틴 MAGIC 파우더는 세포 시트를 비용 효율적인 배양육으로 성장시키기 위한 영양분 전달 3D 스페이서입니다.

생체재료. 2021; 278121155

• 노리스 SCP
• et al.

강성과 토폴로지를 조정할 수 있는 에멀젼 템플릿 마이크로입자: 배양육을 위한 식용 마이크로캐리어로서의 응용.

생체재료. 2022; 287121669

• 리 C.-H.
• et al.

젤라틴-두유 지지체에서 형성된 근육층과 지방층을 정렬하여 적층하여 지방이 함유된 배양육을 생산합니다.

앞. Bioeng. Biotechnol. 2022; 10875069

• 자크 A.
• et al.

미세 구조화된 식용 필름에서 체외 고기의 성장을 모델링합니다.

J. 식품공학 2021; 307110662

• 엔리오네 J.
• et al.

근아세포 성장을 위한 비포유류 바이오폴리머 기반의 식용 스캐폴드.

기재. 2017; 10: 1404

• 리 Y.
• et al.

XNUMX차원 바이오프린팅 기술을 이용한 배양육 생산을 위한 돼지 골격근 조직 제작.

J. 미래식품. 2021; 1: 88-97

• 두타 SD
• et al.

항산화 단백질 가수분해물의 3D 바이오프린팅을 통해 실험실에서 재배한 육류와 유사한 생체 공학 구조.

ACS 적용 메이터. 인터페이스. 2022; 14: 34513-34526

• 이 M.
• et al.

세포와의 시너지 효과를 위해 젤라틴/한천 매트릭스를 조정하여 고품질 배양육을 생산합니다.

ACS 적용 메이터. 인터페이스. 2022; 14: 38235-38245

• 정디.
• et al.

스테이크형 배양육 생산을 위한 3D 바이오프린팅 시스템에서 소 섬유아세포의 효율적인 근육/지방 분화 분화.

Adv. 공상 과학 2022; 9: 2202877

• 리 L.
• et al.

세포 배양 고기를 위한 구조화된 모델을 구축하기 위한 키토산-알긴산나트륨-콜라겐/젤라틴 XNUMX차원 식용 스캐폴드.

국제 J. Biol. 마크로몰. 2022; 209: 668-679

• 제르노프 A.
• et al.

배양육을 위한 식용 세포 미세담체로서의 키토산-콜라겐 하이드로겔 미립자.

식품 하이드로콜. 2022; 129107632

• 안드레아센 RC
• et al.

배양육 생산을 위한 소 골격근 위성 세포의 확장을 촉진하기 위해 식품 산업의 부산물을 기반으로 하는 식품 등급 미세담체 생산.

생체재료. 2022; 286121602

• 타카하시 H.
• et al.

지속 가능한 육류 생산을 위한 품질 관리 소 근육 조직 세포 수확 및 생체 모방 소 근육 조직 공학.

생체재료. 2022; 287121649

• 후루하시 M.
• et al.

밀리미터 두께의 배양 스테이크 제작을 위한 수축성 3D 소 근육 조직의 형성.

NPJ 과학. 음식. 2021; 5: 1-8

• 강D.-H.
• et al.

힘줄-겔 통합 바이오프린팅을 사용하여 세포 섬유를 조립하여 전체 절단 고기와 같은 조직을 가공했습니다.

Nat. 코뮌. 2021; 12: 1-12

• 주 H.
• et al.

돼지 근육 줄기세포 배양육 생산

생체재료. 2022; 287121650