Oberli, MA et al. Lipid-Nanopartikel unterstützten die mRNA-Abgabe für eine wirksame Krebsimmuntherapie. Nano Lett. 17, 1326-1335 (2017).
Kauffman, KJ et al. Optimierung von Lipid-Nanopartikelformulierungen für die mRNA-Abgabe in vivo mit fraktionierten faktoriellen und definitiven Screening-Designs. Nano Lett. 15, 7300-7306 (2015).
Akinc, A. et al. Eine kombinatorische Bibliothek lipidähnlicher Materialien zur Verabreichung von RNAi-Therapeutika. Nat. Biotechn. 26, 561-569 (2008).
Han, X. et al. Eine ionisierbare Lipid-Toolbox für die RNA-Lieferung. Nat. Commun 12, 7233 (2021).
Kim, M. et al. Entwickelte ionisierbare Lipid-Nanopartikel für die gezielte Abgabe von RNA-Therapeutika in verschiedene Zelltypen in der Leber. Wissenschaft Erw. 7, eabf4398 (2021).
Álvarez-Benedicto, E. et al. Optimierung der Phospholipidchemie für eine verbesserte Abgabe von Boten-RNA (mRNA) durch Lipid-Nanopartikel (LNP). Biomaterial. Wissenschaft 10, 549-559 (2022).
Kulkarni, JA, Witzigmann, D., Leung, J., Tam, YYC & Cullis, PR Zur Rolle von Helferlipiden in Lipid-Nanopartikelformulierungen von siRNA. Nanoskala 11, 21733-21739 (2019).
Patel, S. et al. Natürlich vorkommende Cholesterinanaloga in Lipid-Nanopartikeln induzieren eine polymorphe Form und verbessern die intrazelluläre Abgabe von mRNA. Nat. Commun 11, 983 (2020).
Bao, Y. et al. Einfluss der PEGylierung auf die Bioverteilung und Gen-Stilllegung von siRNA/Lipid-Nanopartikel-Komplexen. Pharm. Auflösung 30, 342-351 (2013).
Ju, Y. et al. Anti-PEG-Antikörper, die beim Menschen durch den SARS-CoV-2-Lipid-Nanopartikel-mRNA-Impfstoff verstärkt werden. ACS Nano 16, 11769-11780 (2022).
Akinc, A. et al. Entwicklung von Lipidoid-siRNA-Formulierungen zur systemischen Abgabe an die Leber. Mol.-Nr. Da. 17, 872-879 (2009).
Urits, I. et al. Eine Überprüfung von Patisiran (ONPATTRO®) zur Behandlung von Polyneuropathie bei Menschen mit hereditärer Transthyretin-Amyloidose. Neurol. Dort. 9, 301-315 (2020).
Nationales Zentrum für Immunisierung und Atemwegserkrankungen (USA). Abteilung für Viruserkrankungen. Übersicht und Sicherheit des Moderna-COVID-19-Impfstoffs (auch bekannt als Spikevax). Centers for Disease Control and Prevention (2022) https://stacks.cdc.gov/view/cdc/115700.
Fabiani, M. et al. Wirksamkeit des Comirnaty-Impfstoffs (BNT162b2, BioNTech/Pfizer) bei der Vorbeugung einer SARS-CoV-2-Infektion bei medizinischem Personal, Provinz Treviso, Region Venetien, Italien, 27. Dezember 2020 bis 24. März 2021. Eurosurveillance 26, 2100420 (2021).
Verma, M. et al. Die Landschaft für genomische Medikamente auf Lipid-Nanopartikel-Basis. Nat. Rev. Medikament Discov. 22, 349-350 (2023).
Nationales Zentrum für Immunisierung und Atemwegserkrankungen (USA). Abteilung für Viruserkrankungen. Mögliche Nebenwirkungen nach Erhalt einer COVID-19-Impfung. Centers for Disease Control and Prevention (2023) https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/vaccines/expect/after.html.
Turvey, SE & Broide, DH Angeborene Immunität. J. Allergy Clinic. Immunol. 125S24 - S32 (2010).
Nathan, C. Kontrollpunkte bei Entzündungen. Natur 420, 846-852 (2002).
Takeuchi, O. & Akira, S. Mustererkennungsrezeptoren und Entzündungen. Zelle 140, 805-820 (2010).
Newton, K. & Dixit, VM Signalisierung bei angeborener Immunität und Entzündung. Cold Spring Harb. Perspektive. Biol 4, 3 (2012).
Iwasaki, A. & Medzhitov, R. Kontrolle der adaptiven Immunität durch das angeborene Immunsystem. Nat. Immunol. 16, 343-353 (2015).
Chen, L. et al. Entzündungsreaktionen und entzündungsassoziierte Erkrankungen in Organen. Oncotarget 9, 7204-7218 (2017).
Kang, S., Tanaka, T., Narazaki, M. & Kishimoto, T. Targeting der Interleukin-6-Signalübertragung in der Klinik. Immunität 50, 1007-1023 (2019).
Platanias, LC Mechanismen der Typ-I- und Typ-II-Interferon-vermittelten Signalübertragung. Nat. Rev. Immunol. 5, 375-386 (2005).
Castro, F., Cardoso, AP, Gonçalves, RM, Serre, K. & Oliveira, MJ Interferon-Gamma am Scheideweg der Tumorimmunüberwachung oder -umgehung. Vorderseite. Immunol. 9, 847 (2018).
Müller, U. et al. Funktionelle Rolle von Typ-I- und Typ-II-Interferonen bei der antiviralen Abwehr. Wissenschaft 264, 1918-1921 (1994).
McNab, F., Mayer-Barber, K., Sher, A., Wack, A. & O'Garra, A. Typ-I-Interferone bei Infektionskrankheiten. Nat. Rev. Immunol. 15, 87-103 (2015).
Ivashkiv, LB & Donlin, LT Regulierung von Typ-I-Interferon-Reaktionen. Nat. Rev. Immunol. 14, 36-49 (2014).
Perkins, DJ & Vogel, SN Raum und Zeit: Neue Überlegungen zur Beziehung zwischen Toll-like-Rezeptoren (TLRs) und Typ-I-Interferonen (IFNs). Cytokin 74, 171-174 (2015).
Garcia, M., Meurs, E. & Esteban, M. Die dsRNA-Proteinkinase PKR: Virus- und Zellkontrolle. Biochimie 89, 799-811 (2007).
Dempsey, PW, Allison, ME, Akkaraju, S., Goodnow, CC & Fearon, DT C3d von Komplement als molekulares Adjuvans: Überbrückung angeborener und erworbener Immunität. Wissenschaft 271, 348-350 (1996).
Kabelitz, D. Expression und Funktion von Toll-like-Rezeptoren in T-Lymphozyten. Curr. Meinung. Immunol. 19, 39-45 (2007).
Iwasaki, A. & Medzhitov, R. Toll-like-Rezeptor-Kontrolle der adaptiven Immunantworten. Nat. Immunol. 5, 987-995 (2004).
Bettelli, E., Oukka, M. & Kuchroo, VK T(H)-17-Zellen im Kreis von Immunität und Autoimmunität. Nat. Immunol. 8, 345-350 (2007).
LaRosa, DF et al. Für die Resistenz gegen Toxoplasma gondii ist die T-Zell-Expression von MyD88 erforderlich. Proz. Natl Acad. Wissenschaft 105, 3855-3860 (2008).
Li, B., Jones, LL & Geiger, TL IL-6 fördert die T-Zell-Proliferation und -Expansion unter entzündlichen Bedingungen in Verbindung mit einer niedrigen RORγt-Expression. J. Immunol. 201, 2934-2946 (2018).
Korn, T. & Hiltensperger, M. Rolle von IL-6 bei der Bindung von T-Zell-Untergruppen. Cytokin 146, 155654 (2021).
Karikó, K., Ni, H., Capodici, J., Lamphier, M. & Weissman, D. mRNA ist ein endogener Ligand für den Toll-like-Rezeptor 3. J. Biol.. Chem. 279, 12542-12550 (2004).
Kokkinopoulos, I., Jordan, W. & Ritter, M. Toll-like-Rezeptor-mRNA-Expressionsmuster in menschlichen dendritischen Zellen und Monozyten. Mol.-Nr. Immunol. 42, 957-968 (2005).
Karikó, K., Buckstein, M., Ni, H. & Weissman, D. Unterdrückung der RNA-Erkennung durch Toll-like-Rezeptoren: der Einfluss der Nukleosidmodifikation und der evolutionäre Ursprung von RNA. Immunität 23, 165-175 (2005).
Karikó, K. et al. Der Einbau von Pseudouridin in mRNA ergibt einen überlegenen nichtimmunogenen Vektor mit erhöhter Translationskapazität und biologischer Stabilität. Mol.-Nr. Da. 16, 1833-1840 (2008).
Tahtinen, S. et al. IL-1 und IL-1ra sind Schlüsselregulatoren der Entzündungsreaktion auf RNA-Impfstoffe. Nat. Immunol. 23, 532-542 (2022).
Li, C. et al. Mechanismen der angeborenen und adaptiven Immunität gegen den Pfizer-BioNTech-Impfstoff BNT162b2. Nat. Immunol. 23, 543-555 (2022).
Alameh, M.-G. et al. Lipid-Nanopartikel verstärken die Wirksamkeit von mRNA- und Protein-Untereinheiten-Impfstoffen, indem sie robuste follikuläre T-Helferzell- und humorale Reaktionen induzieren. Immunität 542877–2892.e2877 (2021).
Kranz, LM et al. Die systemische RNA-Abgabe an dendritische Zellen nutzt die antivirale Abwehr für die Krebsimmuntherapie. Natur 534, 396-401 (2016).
Risma, KA et al. Mögliche Mechanismen einer Anaphylaxie gegenüber COVID-19-mRNA-Impfstoffen. J. Allergy Clinic. Immunol. 1472075–2082.e2072 (2021).
Verma, AK, Lavine, KJ & Lin, C.-Y. Myokarditis nach Covid-19-mRNA-Impfung. N. Engl.. J. Med.. 385, 1332-1334 (2021).
Parums, DV Editorial: SARS-CoV-2-mRNA-Impfstoffe und der mögliche Mechanismus der impfstoffinduzierten immunthrombotischen Thrombozytopenie (VITT). Med. Wissenschaft. Überwachen. 27, e932899 (2021).
Nishimura, N. et al. IgA-Vaskulitis nach COVID-19-Impfung. Mod. Rheumatol. Fallbevollmächtigter. 7, 122-126 (2023).
Flemming, A. Der mRNA-Impfstoff ist vielversprechend bei der Autoimmunität. Nat. Rev. Immunol. 21, 72-72 (2021).
Chen, Y. et al. Neu auftretende Autoimmunphänomene nach der COVID-19-Impfung. Immunologie 165, 386-401 (2022).
Laisuan, W. COVID-19-Impfstoffanaphylaxie: aktuelle Erkenntnisse und zukünftige Ansätze. Vorderseite. Allergie 2, 801322 (2021).
Hung, SI, Preclaro, IAC, Chung, WH & Wang, CW Sofortige Überempfindlichkeitsreaktionen, die durch COVID-19-Impfstoffe hervorgerufen werden: aktuelle Trends, mögliche Mechanismen und Präventionsstrategien. Biomedizin 10, 1260 (2022).
Nilsson, L., Csuth, Á., Storsaeter, J., Garvey, LH & Jenmalm, MC Impfstoffallergie: Hinweise, die bei COVID-19-Impfstoffen zu berücksichtigen sind. Curr. Meinung. Allergieklinik. Immunol. 21, 401-409 (2021).
Klimek, L. et al. Allergene Komponenten des mRNA-1273-Impfstoffs gegen COVID-19: mögliche Beteiligung von Polyethylenglykol und IgG-vermittelter Komplementaktivierung. Allergie 76, 3307-3313 (2021).
Sellaturay, P., Nasser, S., Islam, S., Gurugama, P. & Ewan, PW Polyethylenglykol (PEG) ist eine Ursache für eine Anaphylaxie gegenüber dem mRNA-COVID-19-Impfstoff von Pfizer/BioNTech. Klin. Erw. Allergie 51, 861-863 (2021).
Gill, KK, Kaddoumi, A. & Nazzal, S. PEG-Lipid-Mizellen als Arzneimittelträger: physiochemische Eigenschaften, Formulierungsprinzipien und biologische Implikationen. J. Drogenziel. 23, 222-231 (2015).
D'souza, AA & Shegokar, R. Polyethylenglykol (PEG): ein vielseitiges Polymer für pharmazeutische Anwendungen. Gutachten. Drug Deliv. 13, 1257-1275 (2016).
Ibrahim, M. et al. Polyethylenglykol (PEG): die Natur, Immunogenität und Rolle bei der Überempfindlichkeit von PEGylierten Produkten. J. Kontrollfreigabe 351, 215-230 (2022).
Mohamed, M. et al. PEGylierte Liposome: immunologische Reaktionen. Wissenschaft. Technol. Erw. Mater. 20, 710-724 (2019).
Yang, Q. et al. Analyse bereits vorhandener IgG- und IgM-Antikörper gegen Polyethylenglykol (PEG) in der Allgemeinbevölkerung. Anal. Chem.-Nr. 88, 11804-11812 (2016).
Szebeni, J. Komplementaktivierungsbedingte Pseudoallergie: eine durch Nanomedizin und Biologika ausgelöste Stressreaktion im Blut. Mol.-Nr. Immunol. 61, 163-173 (2014).
Koide, H. et al. Die T-Zell-unabhängige B-Zell-Antwort ist für das ABC-Phänomen verantwortlich, das durch wiederholte Injektion von PEGylierten Liposomen hervorgerufen wird. Int. J. Pharm. 392, 218-223 (2010).
Ishida, T., Wang, J. Control. Veröffentlichung 122, 349-355 (2007).
Szebeni, J. et al. Komplementaktivierungsbedingte Herzanaphylaxie bei Schweinen: Rolle von C5a-Anaphylatoxin und Adenosin bei Liposomen-induzierten Anomalien im EKG und in der Herzfunktion. Bin. J. Physiol. Herz Zirk. Physiol. 290, H1050–H1058 (2006).
Guimarães, LE, Baker, B., Perricone, C. & Shoenfeld, Y. Impfstoffe, Adjuvantien und Autoimmunität. Pharm. Auflösung 100, 190-209 (2015).
Toussirot, É. & Bereau, M. Impfung und Induktion von Autoimmunerkrankungen. Entzündung. Ziele für Allergiemedikamente 14, 94-98 (2015).
Wraith, DC, Goldman, M. & Lambert, PH Impfung und Autoimmunerkrankungen: Was ist die Evidenz? Lanzette 362, 1659-1666 (2003).
Banchereau, J. & Pascual, V. Typ-I-Interferon bei systemischem Lupus erythematodes und anderen Autoimmunerkrankungen. Immunität 25, 383-392 (2006).
Barrat, FJ et al. Nukleinsäuren aus Säugetieren können als endogene Liganden für Toll-like-Rezeptoren fungieren und systemischen Lupus erythematodes fördern. J. Exp.. Med. 202, 1131-1139 (2005).
Lövgren, T., Eloranta, ML, Båve, U., Alm, GV & Rönnblom, L. Induktion der Interferon-Alpha-Produktion in plasmazytoiden dendritischen Zellen durch Immunkomplexe, die Nukleinsäure enthalten, die von nekrotischen oder späten apoptotischen Zellen und Lupus-IgG freigesetzt wird. Arthritis Rheum. 50, 1861-1872 (2004).
Marshak-Rothstein, A. Toll-like-Rezeptoren bei systemischen Autoimmunerkrankungen. Nat. Rev. Immunol. 6, 823-835 (2006).
Lau, CM et al. RNA-assoziierte Autoantigene aktivieren B-Zellen durch die kombinierte Bindung von B-Zell-Antigenrezeptor und Toll-like-Rezeptor 7. J. Exp.. Med. 202, 1171-1177 (2005).
Crow, MK, Olferiev, M. & Kirou, KA Typ-I-Interferone bei Autoimmunerkrankungen. Annu. Pfr. Pathol. 14, 369-393 (2019).
Chen, S. et al. Einfluss der Partikelgröße auf die In-vivo-Wirksamkeit von Lipid-Nanopartikel-Formulierungen von siRNA. J. Control. Veröffentlichung 235, 236-244 (2016).
Kimura, N. et al. Entwicklung des iLiNP-Geräts: Feinabstimmung der Lipid-Nanopartikelgröße innerhalb von 10 nm für die Arzneimittelabgabe. ACS Omega 3, 5044-5051 (2018).
Hassett, KJ et al. Einfluss der Lipid-Nanopartikelgröße auf die Immunogenität des mRNA-Impfstoffs. J. Control. Veröffentlichung 335, 237-246 (2021).
Cheng, Q. et al. Nanopartikel für selektives Organ-Targeting (SORT) für die gewebespezifische mRNA-Abgabe und CRISPR-Cas-Geneditierung. Nat. Nanotechnologie. 15, 313-320 (2020).
LoPresti, ST, Arral, ML, Chaudhary, N. & Whitehead, KA Der Ersatz von Helferlipiden durch geladene Alternativen in Lipid-Nanopartikeln erleichtert die gezielte mRNA-Abgabe an Milz und Lunge. J. Control. Veröffentlichung 345, 819-831 (2022).
Bevers, S. et al. Auf die systemische Immunisierung abgestimmte mRNA-LNP-Impfstoffe induzieren eine starke Antitumorimmunität, indem sie Immunzellen der Milz angreifen. Mol.-Nr. Da. 30, 3078-3094 (2022).
Suzuki, T. et al. Von der PEG-Ausscheidungsrate abhängige Blutclearance von PEGylierten Lipid-Nanopartikeln bei Mäusen: Eine schnellere PEG-Ausscheidung schwächt die Anti-PEG-IgM-Produktion. Int. J. Pharm. 588, 119792 (2020).
Nakamura, T. et al. Der Einfluss von Größe und Ladung von Lipid-Nanopartikeln, die durch mikrofluidisches Mischen hergestellt wurden, auf ihre Lymphknotentransitivität und -verteilung. Mol.-Nr. Pharm. 17, 944-953 (2020).
Thomas, SN, Rohner, NA & Edwards, EE Auswirkungen des Lymphtransports zu Lymphknoten auf Immunität und Immuntherapie. Jährlich Rev. Biomed. Eng. 18, 207-233 (2016).
Vangasseri, DP et al. Immunstimulation dendritischer Zellen durch kationische Liposomen. Mol. Mitglied Biol. 23, 385-395 (2006).
Nakanishi, T. et al. Positiv geladene Liposome fungieren als wirksames Immunadjuvans bei der Auslösung von Immunreaktionen auf lösliche Proteine. Biochem. Biophys. Res. Commun. 240, 793-797 (1997).
Nakanishi, T. et al. Positiv geladene Liposome fungieren als effizientes Immunadjuvans bei der Auslösung einer zellvermittelten Immunantwort auf lösliche Proteine. J. Control. Veröffentlichung 61, 233-240 (1999).
Hilgers, LA & Snippe, H. DDA als immunologisches Adjuvans. Res. Immunol. 143, 494-503 (1992).
Hwang, TL, Aljuffali, IA, Lin, CF, Chang, YT & Fang, JY Kationische Additive in Nanosystemen aktivieren Zytotoxizität und Entzündungsreaktion menschlicher Neutrophilen: Lipid-Nanopartikel versus Polymer-Nanopartikel. Int. J. Nanomed. 10, 371-385 (2015).
Lappalainen, K., Jääskeläinen, I., Syrjänen, K., Urtti, A. & Syrjänen, S. Vergleich von Zellproliferations- und Toxizitätstests unter Verwendung zweier kationischer Liposomen. Pharm. Auflösung 11, 1127-1131 (1994).
Wan, C., Allen, TM & Cullis, PR Lipid-Nanopartikel-Abgabesysteme für siRNA-basierte Therapeutika. Arzneimittellieferung Übers. Res. 4, 74-83 (2014).
Semple, SC et al. Effiziente Einkapselung von Antisense-Oligonukleotiden in Lipidvesikeln unter Verwendung ionisierbarer Aminolipide: Bildung neuartiger kleiner multilamellarer Vesikelstrukturen. Biochim. Biophys. Acta 1510, 152-166 (2001).
Wilson, SC et al. Echtzeitmessung der PEG-Ablösung aus Lipid-Nanopartikeln im Serum mittels NMR-Spektroskopie. Mol.-Nr. Pharm. 12, 386-392 (2015).
Miteva, M. et al. Optimierung der PEGylierung gemischter Mizellen zur Überwindung intrazellulärer und systemischer siRNA-Abgabebarrieren. Biomaterialien 38, 97-107 (2015).
Mehvar, R. Modulation der Pharmakokinetik und Pharmakodynamik von Proteinen durch Polyethylenglykol-Konjugation. J. Pharm. Pharm. Wissenschaft. 3, 125-136 (2000).
Jiao, J. et al. Der Beitrag der PEG-Molekulargewichte in PEGylierten Emulsionen zu den verschiedenen Phasen des Phänomens der beschleunigten Blutclearance (ABC) bei Ratten. AAPS PharmSciTech. 21, 300 (2020).
Xu, H., Wang, KQ, Deng, YH & Chen, DW Auswirkungen spaltbarer PEG-Cholesterinderivate auf die beschleunigte Blutclearance von PEGylierten Liposomen. Biomaterialien 31, 4757-4763 (2010).
Son, K. et al. Umgehung des Phänomens der beschleunigten Blutclearance durch Polysarkosinbeschichtung von Liposomen. J. Control. Veröffentlichung 322, 209-216 (2020).
Hu, Y., Hou, Y., Wang, H. & Lu, H. Polysarkosin als Alternative zu PEG für die therapeutische Proteinkonjugation. Biokonjug. Chem. 29, 2232-2238 (2018).
Miao, L., Zhang, Y. & Huang, L. mRNA-Impfstoff für die Krebsimmuntherapie. Mol. Krebs 20, 41 (2021).
Guevara, ML, Persano, F. & Persano, S. Fortschritte bei Lipid-Nanopartikeln für die mRNA-basierte Krebsimmuntherapie. Vorderseite. Chem. 8, 589959 (2020).
Shimosakai, R., Khalil, IA, Kimura, S. & Harashima, H. mRNA-beladene Lipid-Nanopartikel zielen auf Immunzellen in der Milz ab und werden als Krebsimpfstoffe verwendet. Medizin 15, 1017 (2022).
AWATE, S., Babiuk, L. & Mutwiri, G. Wirkmechanismen von Adjuvantien. Vorderseite. Immunol 4, 114 (2013).
Brito, LA, Malyala, P. & O'Hagan, DT Impfstoff-Adjuvans-Formulierungen: eine pharmazeutische Perspektive. Semin. Immunol. 25, 130-145 (2013).
Tom, JK et al. Anwendungen immunmodulatorischer Immunsynergien für die Entdeckung von Adjuvanzien und die Entwicklung von Impfstoffen. Trends Biotechnologie. 37, 373-388 (2019).
Lee, K. et al. Adjuvans integrierte Lipid-Nanopartikel für eine verbesserte mRNA-vermittelte Krebsimmuntherapie. Biomaterial. Wissenschaft 8, 1101-1105 (2020).
Luan, N., Cao, H., Wang, Y., Lin, K. & Liu, C. Ionisierbare Lipid-Nanopartikel verstärkten die synergistische Adjuvanswirkung von CpG-ODNs und QS21 in einem Impfstoff gegen die Glykoprotein-E-Untereinheit des Varizella-Zoster-Virus. Pharmazie 14, 973 (2022).
Zhu, D. & Tuo, W. QS-21: ein wirksames Impfstoffadjuvans. Nat. Prod. Chem. Res. 3, e113 (2016).
Miao, L. et al. Die Verabreichung von mRNA-Impfstoffen mit heterozyklischen Lipiden erhöht die Antitumorwirksamkeit durch STING-vermittelte Immunzellaktivierung. Nat. Biotechn. 37, 1174-1185 (2019).
Buschmann, MD et al. Nanomaterial-Abgabesysteme für mRNA-Impfstoffe. Impfstoffe 9, 65 (2021).
Zhang, Y. et al. Der vom STING-Agonisten abgeleitete LNP-mRNA-Impfstoff verbessert die schützende Immunität gegen SARS-CoV-2. Nano Lett. 23, 2593-2600 (2023).
Ripoll, M. et al. Ein imidazolmodifiziertes Lipid verleiht Mäusen und nichtmenschlichen Primaten eine verbesserte mRNA-LNP-Stabilität und starke Immunisierungseigenschaften. Biomaterialien 286, 121570 (2022).
Ruiz, María Esperanza und Sebastián Scioli Montoto. et al. Wege der Arzneimittelverabreichung. ADME-Prozesse in den pharmazeutischen Wissenschaften: Dosierung, Design und Erfolg der Pharmakotherapie, 97 – 133 (2018).
Francia, V., Schiffelers, RM, Cullis, PR & Witzigmann, D. Die biomolekulare Korona von Lipid-Nanopartikeln für die Gentherapie. Biokonjug. Chem. 31, 2046-2059 (2020).
Van der Jeught, K. et al. Dendritische Zellen, die auf mRNA-Lipopolyplexe abzielen, kombinieren eine starke Antitumor-T-Zell-Immunität mit verbesserter Entzündungssicherheit. ACS Nano 12, 9815-9829 (2018).
Anderluzzi, G. et al. Die Rolle des Nanopartikelformats und des Verabreichungswegs für die Wirksamkeit des selbstverstärkenden mRNA-Impfstoffs. J. Control. Veröffentlichung 342, 388-399 (2022).
Schnyder, JL et al. Vergleich äquivalenter fraktionierter Impfstoffdosen, die auf intradermalem und intramuskulärem oder subkutanem Weg verabreicht werden: eine systematische Überprüfung. Reise Med. Infekt. Dis. 41, 102007 (2021).
Van Hoecke, L. et al. Die gegensätzliche Wirkung von Typ-I-IFN auf die T-Zell-Antwort durch nicht-modifizierte mRNA-Lipoplex-Impfstoffe wird durch den Verabreichungsweg bestimmt. Mol. Ther. Nukleinsäuren 22, 373-381 (2020).
Dilliard, SA, Cheng, Q. & Siegwart, DJ Über den Mechanismus der gewebespezifischen mRNA-Abgabe durch selektive Organ-Targeting-Nanopartikel. Proz. Natl Acad. Wissenschaft 118, e2109256118 (2021).
Zuckerman, JN Die Bedeutung der Injektion von Impfstoffen in den Muskel. Unterschiedliche Patienten benötigen unterschiedliche Nadelgrößen. BMJ 321, 1237-1238 (2000).
Intapiboon, P. et al. Immunogenität und Sicherheit eines intradermalen BNT162b2-mRNA-Impfstoff-Boosters nach zwei Dosen inaktiviertem SARS-CoV-2-Impfstoff in einer gesunden Bevölkerung. Impfstoffe 9, 1375 (2021).
Hunter, J. Intramuskuläre Injektionstechniken. Krankenschwestern. Stand. 22, 35 (2008).
Leveque, D. Subkutane Verabreichung von Antikrebsmitteln. Anticancer Res. 34, 1579-1586 (2014).
Oussoren, C. & Storm, G. Liposomen zur gezielten Behandlung der Lymphgefäße durch subkutane Verabreichung. Erw. Arzneimittelabgabe Rev. 50, 143-156 (2001).
Romani, N. et al. Zielt auf dendritische Zellen der Haut, um die intradermale Impfung zu verbessern. Curr. Spitze. Mikrobiol. Immunol. 351, 113-138 (2012).
Kis, EE, Winter, G. & Myschik, J. Geräte zur intradermalen Impfung. Impfen Sie 30, 523-538 (2012).
Kim, Y.-C., Jarrahian, C., Zehrung, D., Mitragotri, S. & Prausnitz, MR Abgabesysteme für die intradermale Impfung. Intradermales Immunsystem. 351, 77-112 (2012).
Fabrizi, F., Dixit, V., Magnini, M., Elli, A. & Martin, P. Metaanalyse: intradermale vs. intramuskuläre Impfung gegen das Hepatitis-B-Virus bei Patienten mit chronischer Nierenerkrankung. Aliment Pharm. Dort. 24, 497-506 (2006).
Schnyder, JL et al. Teildosis der intradermalen Impfung im Vergleich zur intramuskulären und subkutanen Impfung – Eine systematische Überprüfung und Metaanalyse. Reise Med. Infekt. Dis. 37, 101868 (2020).
Jung, GS & Kim, HS Eine neuartige Technik zur Schmerzlinderung durch intradermale Injektion von Botulinumtoxin Typ A. Plast. Rekonstr. Surg. Globus. Offen 9, e3417 (2021).
Ipp, MM et al. Nebenwirkungen der Impfung gegen Diphtherie, Tetanus und Pertussis-Polio im Alter von 18 Monaten: Einfluss der Injektionsstelle und der Nadellänge. Pädiatrie 83, 679-682 (1989).
Gallorini, S., O'Hagan, DT & Baudner, BC In Schleimhautabgabe von Biopharmazeutika: Biologie, Herausforderungen und Strategien (Hrsg. José das Neves & Bruno Sarmento) 3–33 (Springer, 2014).
Tang, DC & Nguyen, HH Die Yin-Yang-Arme von Impfstoffen: krankheitsbekämpfende Kraft versus gewebezerstörende Entzündung. Expert Rev. Impfstoffe 13, 417-427 (2014).
Broos, K. et al. Die partikelvermittelte intravenöse Verabreichung von Antigen-mRNA führt trotz der Induktion von Typ-I-Interferon zu starken Antigen-spezifischen T-Zell-Reaktionen. Mol. Ther. Nukleinsäuren 5, e326 (2016).
Mao, T. et al. Der unadjuvantierte intranasale Spike-Impfstoff löst eine schützende Schleimhautimmunität gegen Sarbecoviren aus. Wissenschaft 378, eabo2523 (2022).
Medzhitov, R. & Janeway, C. Jr. Angeborene Immunerkennung: Mechanismen und Wege. Immunol. Rev. 173, 89-97 (2000).
O'Neill, LAJ, Golenbock, D. & Bowie, AG Die Geschichte der Toll-like-Rezeptoren – eine Neudefinition der angeborenen Immunität. Nat. Rev. Immunol. 13, 453-460 (2013).
Kopp, EB & Medzhitov, R. Die Toll-Rezeptor-Familie und die Kontrolle der angeborenen Immunität. Curr. Meinung. Immunol. 11, 13-18 (1999).
Clement, M. et al. IFITM3 schränkt die virusinduzierte entzündliche Zytokinproduktion ein, indem es Nogo-B-vermittelte TLR-Reaktionen begrenzt. Nat. Commun 13, 5294 (2022).
Xu, S. et al. Konstitutive MHC-Klasse-I-Moleküle regulieren TLR-ausgelöste Entzündungsreaktionen über den Fps-SHP-2-Weg negativ. Nat. Immunol. 13, 551-559 (2012).
Zheng, D. et al. Das epitheliale Nlrp10-Inflammasom vermittelt den Schutz vor intestinaler Autoinflammation. Nat. Immunol. 24, 585-594 (2023).
Kagan, JC Überschüssige Lipide auf Endosomen bestimmen die Lokalisierung von NLRP3 und die Aktivierung von Inflammasomen. Nat. Immunol. 24, 3-4 (2023).
Karmacharya, P., Patil, BR & Kim, JO Jüngste Fortschritte bei Lipid-mRNA-Nanopartikeln als Behandlungsoption für die Krebsimmuntherapie. J. Pharm. Investig. 52, 415-426 (2022).
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- Quelle: https://www.nature.com/articles/s12276-023-01086-x
