Klotter, V. et al. Bedömning av patologisk ökning av leverstelhet möjliggör tidigare diagnos av CFLD: resultat från en prospektiv longitudinell kohortstudie. PLoS ONE 12, e0178784 (2017).
Medrano, LM et al. Förhöjd leverstelhet är kopplad till ökade biomarkörer för inflammation och immunaktivering hos HIV/hepatit C-virus-saminfekterade patienter. AIDS 32, 1095-1105 (2018).
Tomlin, H. & Piccinini, AM Ett komplext samspel mellan den extracellulära matrisen och det medfödda immunsvaret mot mikrobiella patogener. Immunologi 155, 186-201 (2018).
Martinez-Vidal, L. et al. Orsaksfaktorer till vävnadsstyvhet och klinisk relevans inom urologi. Kommun Biol. 4, 1011 (2021).
Mohammadi, H. & Sahai, E. Mekanismer och påverkan av förändrad tumörmekanik. Nat. Cell Biol. 20, 766-774 (2018).
Du, H. et al. Justera immunitet genom vävnadsmekanotransduktion. Nat. Rev. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41577-022-00761-w (2022).
Zhu, C., Chen, W., Lou, J., Rittase, W. & Li, K. Mechanosensing through immunoreceptors. Nat. Immunol. 20, 1269-1278 (2019).
Judokusumo, E., Tabdanov, E., Kumari, S., Dustin, ML & Kam, LC Mechanosensing in T-lymfocyte activation. Biophys. J. 102, L5 – L7 (2012).
O'Connor, RS et al. Substratstyvhet reglerar mänsklig T-cellsaktivering och proliferation. J. Immunol. 189, 1330-1339 (2012).
Saitakis, M. et al. Olika TCR-inducerade T-lymfocytsvar förstärks av stelhet med varierande känslighet. Elife 6, e23190 (2017).
Blumenthal, D., Chandra, V., Avery, L. & Burkhardt, JK Mouse T-cell priming förbättras genom mognadsberoende förstyvning av dendritiska cellbarken. Elife 9, e55995 (2020). Viktigt arbete som belyser den mekaniska aspekten av dendritiska cellmedierad aktivering av T-celler.
Basu, R. et al. Cytotoxiska T-celler använder mekanisk kraft för att potentiera målcellsdöd. Cell 165, 100-110 (2016). Seminal studie som belyser den kritiska rollen av mekaniska krafter i cytotoxisk aktivitet hos T-celler.
Liu, Y. et al. Cellmjukhet förhindrar cytolytisk T-cellsdödning av tumörrepopulerande celler. Cancer Res. 81, 476-488 (2021).
Tello-Lafoz, M. et al. Cytotoxiska lymfocyter riktar sig mot karakteristiska biofysiska sårbarheter i cancer. Immunitet 54, 1037–1054.e7 (2021).
Lei, K. et al. Förstyvning av cancerceller via kolesterolutarmning förbättrar adoptiv T-cellsimmunterapi. Nat. Biomed. Eng. 5, 1411-1425 (2021). Inflytelserika studier (ref. 14,15) som visar att förstyvning av tumörceller genom genetisk manipulation riktad mot MRTF eller genom utarmning av kolesterol i cellmembranet resulterar i högre sårbarhet för T-cellsmedierad dödande.
Provenzano, PP et al. Kollagen omorganisation vid tumör-stromal gränssnittet underlättar lokal invasion. BMC Med. 4, 38 (2006).
Levental, KR et al. Matrix tvärbindning tvingar fram tumörprogression genom att förbättra integrinsignalering. Cell 139, 891-906 (2009).
Goetz, JG et al. Biomekanisk ombyggnad av mikromiljön med stromal caveolin-1 gynnar tumörinvasion och metastaser. Cell 146, 148-163 (2011).
Massagué, J. TGFβ vid cancer. Cell 134, 215-230 (2008).
Insua-Rodríguez, J. et al. Stresssignalering i bröstcancerceller inducerar matriskomponenter som främjar kemoresistent metastasering. EMBO Mol. Med. 10, e9003 (2018).
Han, X. et al. Extracellulära matrisfysikaliska egenskaper styr diffusionen av nanopartiklar i tumörmikromiljö. Proc. Natl Acad. Sci. usa 120, e2209260120 (2023).
Salmon, H. et al. Matrisarkitektur definierar den föredragna lokaliseringen och migreringen av T-celler in i stroma hos mänskliga lungtumörer. J. Clin. Investera. 122, 899-910 (2012).
Salnikov, AV et al. Sänkning av tumörtrycket i interstitiell vätska ökar specifikt effekten av kemoterapi. FASEB J. 17, 1756-1758 (2003).
Guck, J. et al. Optisk deformerbarhet som en inneboende cellmarkör för att testa malign transformation och metastatisk kompetens. Biophys. J. 88, 3689-3698 (2005).
Plodinec, M. et al. Den nanomekaniska signaturen för bröstcancer. Nat. Nanoteknik. 7, 757-765 (2012).
Chen, Y., McAndrews, KM & Kalluri, R. Klinisk och terapeutisk relevans av cancerassocierade fibroblaster. Nat. Rev. Clin. Oncol. 18, 792-804 (2021).
Gensbittel, V. et al. Mekanisk anpassningsförmåga hos tumörceller vid metastasering. Dev. Cell 56, 164-179 (2021). Denna recension presenterar hypotesen att tumörceller justerar sina mekaniska egenskaper under hela sin metastatiska resa.
Lv, J. et al. Cellmjukhet reglerar tumörframkallande egenskaper och stamness hos cancerceller. EMBO J. 40, e106123 (2021).
Matthews, HK et al. Onkogen signalering förändrar cellform och mekanik för att underlätta celldelning under instängdhet. Dev. Cell 52, 563–573.e3 (2020).
Young, KM et al. Korrelera mekaniska och genuttrycksdata på singelcellsnivå för att undersöka metastaserande fenotyper. iScience 26, 106393 (2023).
Rianna, C., Radmacher, M. & Kumar, S. Direkta bevis för att tumörceller mjuknar när de navigerar i begränsade utrymmen. Mol. Biol. Cell 31, 1726-1734 (2020).
Regmi, S., Fu, A. & Luo, KQ Höga skjuvspänningar under träningsförhållanden förstör cirkulerande tumörceller i ett mikrofluidiskt system. Sci. Rep. 7, 39975 (2017).
Moose, DL et al. Cancerceller motstår mekanisk destruktion i cirkulationen via rhoa/actomyosin-beroende mekano-anpassning. Cell Rep. 30, 3864–3874.e6 (2020).
Chen, J. et al. Effektiv extravasering av tumörrepopulerande celler beror på celldeformerbarhet. Sci. Rep. 6, 19304 (2016).
Saito, D. et al. Styvhet hos primordiala könsceller krävs för deras extravasation i fågelembryon. iScience 25, 105629 (2022).
Er, EE et al. Pericyte-liknande spridning av spridda cancerceller aktiverar YAP och MRTF för metastatisk kolonisering. Nat. Cell Biol. 20, 966-978 (2018).
Wen, Z., Zhang, Y., Lin, Z., Shi, K. & Jiu, Y. Cytoskelett – en avgörande nyckel i värdcellen för coronavirusinfektion. J. Mol. Cell. Biol. 12, 968-979 (2021).
Paluck, A. et al. Roll av ARP2/3-komplexdriven aktinpolymerisation vid RSV-infektion. Patogener 11, 26 (2021).
Kubánková, M. et al. Fysisk fenotyp av blodkroppar förändras i COVID-19. Biophys. J. 120, 2838-2847 (2021).
Yang, J., Barrila, J., Roland, KL, Ott, CM & Nickerson, CA Fysiologisk vätskeskjuvning förändrar virulenspotentialen hos invasiva, multiresistenta icke-tyfus Salmonella typhimurium D23580. npj Mikrogravitation 2, 16021 (2016).
Padron, GC et al. Skjuvhastighet sensibiliserar bakteriella patogener för H2O2 påfrestning. Proc. Natl Acad. Sci. usa 120, e2216774120 (2023).
Mikaty, G. et al. Extracellulär bakteriepatogen inducerar omorganisation av värdcellytan för att motstå skjuvstress. PLoS Pathhog. 5, e1000314 (2009).
Kuo, C. et al. Rhinovirusinfektion inducerar extracellulär matrisproteinavlagring i astmatiska och icke-astmatiska glatta muskelceller i luftvägarna. Am. J. Physiol. Lungcell. Mol. Physiol. 300, L951 – L957 (2011).
Nagy, N. et al. Hyaluronan vid immunförändringar och autoimmuna sjukdomar. Matrix Biol. 78-79, 292-313 (2019).
Fingleton, B. Matrix metalloproteinaser som regulatorer av inflammatoriska processer. Biochim. Biophys. Acta Mol. Cell Res. 1864, 2036-2042 (2017).
Krishnamurty, AT & Turley, SJ Lymfkörtelstromaceller: kartografer av immunsystemet. Nat. Immunol. 21, 369-380 (2020).
Wynn, TA Integrerande mekanismer för lungfibros. J. Exp. Med. 208, 1339-1350 (2011).
Tschöpe, C. et al. Myokardit och inflammatorisk kardiomyopati: aktuella bevis och framtida riktningar. Nat. Pastor Cardiol. 18, 169-193 (2021).
Fabre, T. et al. Identifiering av en brett fibrogen makrofagundergrupp inducerad av typ 3-inflammation. Sci. Immunol. 8, eadd8945 (2023).
de Boer, RA et al. Mot bättre definition, kvantifiering och behandling av fibros vid hjärtsvikt. En vetenskaplig färdplan av Committee of Translational Research av Heart Failure Association (HFA) i European Society of Cardiology. Eur. J. Hjärtsvikt. 21, 272-285 (2019).
Liu, F. et al. Återkopplingsförstärkning av fibros genom matrisstyvning och COX-2-dämpning. J. Cell Biol. 190, 693-706 (2010).
Georges, PC et al. Ökad styvhet i råttlevern föregår matrisavsättning: konsekvenser för fibros. Am. J. Physiol. Magtarm. Lever Physiol. 293, G1147–G1154 (2007).
Stock, KF et al. ARFI-baserad kvantifiering av vävnadselasticitet i jämförelse med histologi för diagnos av njurtransplantationsfibros. Clin. Hemorheol. Microcirc. 46, 139-148 (2010).
Gadd, VL et al. Det portala inflammatoriska infiltratet och ductulära reaktionen vid human alkoholfri fettleversjukdom. Hepatology 59, 1393-1405 (2014).
Mogilenko, DA, Shchukina, I. & Artyomov, MN Immun åldrande vid encellsupplösning. Nat. Rev. Immunol. 22, 484-498 (2022).
Roman, MJ et al. Arteriell stelhet vid kroniska inflammatoriska sjukdomar. Hypertension 46, 194-199 (2005).
Klingberg, F., Hinz, B. & White, ES Myofibroblastmatrisen: implikationer för vävnadsreparation och fibros: myofibroblastmatrisen. J. Pathol. 229, 298-309 (2013).
Liu, F. et al. Mekanosignalering genom YAP och TAZ driver fibroblastaktivering och fibros. Am. J. Physiol. Lungcell. Mol. Physiol. 308, L344 – L357 (2015).
Tomasek, JJ, Gabbiani, G., Hinz, B., Chaponnier, C. & Brown, RA Myofibroblaster och mekanoreglering av bindvävsremodellering. Nat. Pastor Mol. Cell Biol. 3, 349-363 (2002).
Munger, JS et al. En mekanism för att reglera lunginflammation och fibros: integrinet αvβ6 binder och aktiverar latent TGF β1. Cell 96, 319-328 (1999).
Santos, A. & Lagares, D. Matrisstyvhet: ledaren för organfibros. Curr. Reumatol. Rep. 20, 2 (2018).
Morvan, MG & Lanier, LL NK-celler och cancer: du kan lära medfödda celler nya knep. Nat. Rev. cancer 16, 7-19 (2016).
Janeway, CA Hur immunsystemet fungerar för att skydda värden från infektion: en personlig syn. Proc. Natl Acad. Sci. usa 98, 7461-7468 (2001).
Dustin, ML T-cellsaktivering genom immunologiska synapser och kinapser. Immunol. Varv. 221, 77-89 (2008).
Feng, Y., Zhao, X., White, AK, Garcia, KC & Fordyce, PM En pärlbaserad metod för kartläggning med hög genomströmning av sekvens- och kraftberoendet av T-cellsaktivering. Nat. metoder 19, 1295-1305 (2022).
Mordechay, L. et al. Mekanisk reglering av den cytotoxiska aktiviteten hos naturliga mördarceller. ACS Biomater. Sci. Eng. 7, 122-132 (2021).
Lei, K., Kurum, A. & Tang, L. Mekanisk immunteknik av T-celler för terapeutiska tillämpningar. Ackumulation Chem. Res. 53, 2777-2790 (2020). Omfattande genomgång av de senaste framstegen inom mekanisk immunteknik och deras potentiella terapeutiska tillämpningar.
Seghir, R. & Arscott, S. Utökat PDMS-styvhetsområde för flexibla system. Sens. Ställdon Phys. 230, 33-39 (2015).
Guimarães, CF, Gasperini, L., Marques, AP & Reis, RL Styvheten hos levande vävnader och dess konsekvenser för vävnadsteknik. Nat. Pastor Mater. 5, 351-370 (2020).
Denisin, AK & Pruitt, BL Justering av polyakrylamidgelens styvhet för mekanobiologiska tillämpningar. ACS Appl. Mater. gränssnitt 8, 21893-21902 (2016).
Geissmann, F. et al. Utveckling av monocyter, makrofager och dendritiska celler. Vetenskap 327, 656-661 (2010).
Follain, G. et al. Vätskor och deras mekanik i tumörtransit: forma metastaser. Nat. Rev. cancer 20, 107-124 (2020).
Baratchi, S. et al. Transkateter aortaklaffimplantation representerar en antiinflammatorisk terapi via minskning av skjuvspänningsinducerad, piezo-1-medierad monocytaktivering. Cirkulation 142, 1092-1105 (2020).
Serafini, N. et al. TRPM4-kanalen kontrollerar monocyt- och makrofagfunktion, men inte neutrofil funktion för överlevnad vid sepsis. J. Immunol. 189, 3689-3699 (2012).
Beningo, KA & Wang, Y. Fc-receptormedierad fagocytos regleras av målets mekaniska egenskaper. J. Cell Sci. 115, 849-856 (2002).
Sosale, NG et al. Cellstyvhet och form åsidosätter CD47:s "själv"-signalering vid fagocytos genom att hyperaktivera myosin-II. Blod 125, 542-552 (2015).
Sridharan, R., Cavanagh, B., Cameron, AR, Kelly, DJ & O'Brien, FJ Materialstyvhet påverkar makrofagernas polariseringstillstånd, funktion och migrationssätt. Acta Biomater. 89, 47-59 (2019).
Hu, Y. et al. Molecular force imaging avslöjar att integrinberoende mekanisk kontrollpunkt reglerar Fcy-receptorförmedlad fagocytos i makrofager. Nano Lett. 23, 5562-5572 (2023).
Atcha, H. et al. Mekaniskt aktiverad jonkanal Piezo1 modulerar makrofagpolarisering och styvhetsavkänning. Nat. Commun. 12, 3256 (2021).
Geng, J. et al. TLR4-signalering via Piezo1 engagerar och förbättrar det makrofagmedierade värdsvaret under bakterieinfektion. Nat. Commun. 12, 3519 (2021).
Dupont, S. et al. YAP/TAZ:s roll i mekanotransduktion. Natur 474, 179-183 (2011).
Rice, AJ et al. Matrisstyvhet inducerar epitel-mesenkymal övergång och främjar kemoresistens i pankreascancerceller. onkogenes 6, e352 (2017).
Oliver-De La Cruz, J. et al. Substratmekaniken styr adipogenesen genom YAP-fosforylering genom att diktera cellspridning. Biomaterial 205, 64-80 (2019).
Meli, VS et al. YAP-medierad mekanotransduktion ställer in makrofagernas inflammatoriska respons. Sci. Adv. 6, eabb8471 (2020).
Steinman, RM Beslut om dendritiska celler: dåtid, nutid och framtid. Annu. Pastor Immunol. 30, 1-22 (2012).
Moreau, HD et al. Makropinocytos övervinner riktningsbias i dendritiska celler på grund av hydrauliskt motstånd och underlättar utforskning av rymden. Dev. Cell 49, 171–188.e5 (2019).
Laplaud, V. et al. Att klämma ihop cortex av levande celler avslöjar tjockleksinstabilitet orsakad av myosin II-motorer. Sci. Adv. 7, eabe3640 (2021).
Barbier, L. et al. Myosin II-aktivitet behövs selektivt för migration i mycket begränsade mikromiljöer i mogna dendritiska celler. Främre. Immunol. 10, 747 (2019).
Chabaud, M. et al. Cellmigrering och antigeninfångning är antagonistiska processer kopplade av myosin II i dendritiska celler. Nat. Commun. 6, 7526 (2015).
Leithner, A. et al. Aktindynamik för dendritiska celler styr kontaktvaraktighet och primingseffektivitet vid den immunologiska synapsen. J. Cell Biol. 220, e202006081 (2021).
Kang, J.-H. et al. Biomekaniska krafter förbättrar riktad migration och aktivering av benmärgshärledda dendritiska celler. Sci. Rep. 11, 12106 (2021).
van den Dries, K. et al. Geometriavkänning av dendritiska celler dikterar rumslig organisation och PGE2-inducerad upplösning av podosomer. Cell. Mol. Life Sci. 69, 1889-1901 (2012).
Chakraborty, M. et al. Mekanisk styvhet styr dendritiska cellernas metabolism och funktion. Cell Rep. 34, 108609 (2021).
Mennens, SFB et al. Substratstyvhet påverkar fenotyp och funktion hos humana antigenpresenterande dendritiska celler. Sci. Rep. 7, 17511 (2017).
Figdor, CG, van Kooyk, Y. & Adema, GJ C-typ lektinreceptorer på dendritiska celler och langerhansceller. Nat. Rev. Immunol. 2, 77-84 (2002).
Bufi, N. et al. Mänskliga primära immunceller uppvisar distinkta mekaniska egenskaper som modifieras av inflammation. Biophys. J. 108, 2181-2190 (2015).
Comrie, WA, Babich, A. & Burkhardt, JK F-aktinflöde driver affinitetsmognad och rumslig organisation av LFA-1 vid den immunologiska synapsen. J. Cell Biol. 208, 475-491 (2015).
Wang, Y. et al. Dendritisk cell Piezo1 styr differentieringen av TH1 och Treg celler i cancer. Elife 11, e79957 (2022).
Valignat, M.-P. et al. Lymfocyter kan självstyra passivt med vindflöjelsuropoder. Nat. Commun. 5, 5213 (2014).
Roy, NH, MacKay, JL, Robertson, TF, Hammer, DA & Burkhardt, JK Crk-adapterproteiner förmedlar aktinberoende T-cellmigrering och mekanosens inducerad av integrinet LFA-1. Sci. Signal. 11, eaat3178 (2018).
Hope, JM et al. Vätskeskjuvspänning ökar T-cellsaktiveringen genom Piezo1. BMC Biol. 20, 61 (2022).
Husson, J., Chemin, K., Bohineust, A., Hivroz, C. & Henry, N. Kraftgenerering vid T-cellreceptorengagemang. PLoS ONE 6, e19680 (2011). En elegant användning av en biomembrankraftsondteknik för att mäta krafter som utövas av T-celler vid ingrepp med antigenpresenterande celler.
Liu, B., Chen, W., Evavold, BD & Zhu, C. Ackumulering av dynamiska fångstbindningar mellan TCR och agonistpeptid-MHC utlöser T-cellssignalering. Cell 157, 357-368 (2014).
Thauland, TJ, Hu, KH, Bruce, MA & Butte, MJ Cytoskelettadaptivitet reglerar T-cellsreceptorsignalering. Sci. Signal. 10, eaah3737 (2017).
Gaertner, F. et al. WASp utlöser mekanokänsliga aktinplåster för att underlätta migration av immunceller i täta vävnader. Dev. Cell 57, 47–62.e9 (2022).
Majedi, FS et al. T-cellsaktivering moduleras av den mekaniska 3D-mikromiljön. Biomaterial 252, 120058 (2020).
Wang, H. et al. ZAP-70: ett viktigt kinas i T-cellssignalering. Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2, a002279 (2010).
Bashour, KT et al. CD28 och CD3 har kompletterande roller i T-cells dragkrafter. Proc. Natl Acad. Sci. usa 111, 2241-2246 (2014).
Hu, KH & Butte, MJ T-cellsaktivering kräver kraftgenerering. J. Cell Biol. 213, 535-542 (2016).
Liu, Y. et al. DNA-baserade nanopartikelspänningssensorer avslöjar att T-cellsreceptorer överför definierade pN-krafter till sina antigener för ökad trohet. Proc. Natl Acad. Sci. usa 113, 5610-5615 (2016).
Tabdanov, E. et al. Mikromönster av TCR- och LFA-1-ligander avslöjar komplementära effekter på cytoskelettmekanik i T-celler. Integr. Biol. 7, 1272-1284 (2015).
Govendir, MA et al. T-cells cytoskelettkrafter formar synapstopografi för målinriktad lysis via membrankrökningsbias av perforin. Dev. Cell 57, 2237–2247.e8 (2022).
Wang, MS et al. Mekaniskt aktiva integriner riktar sig mot lytisk sekretion vid immunsynapsen för att underlätta cellulär cytotoxicitet. Nat. Commun. 13, 3222 (2022).
Liu, CSC et al. Banbrytande: Piezo1-mekanosensorer optimerar mänsklig T-cellsaktivering. J. Immunol. 200, 1255-1260 (2018).
Jin, W. et al. T-cellsaktivering och immunsynapsorganisation svarar på mikroskaliga mekanik hos strukturerade ytor. Proc. Natl Acad. Sci. usa 116, 19835-19840 (2019).
Kumari, S. et al. Cytoskelettspänning upprätthåller aktivt den migrerande T-cells synaptiska kontakten. EMBO J. 39, e102783 (2020).
Huby, RDJ, Weiss, A. & Ley, SC Nocodazole hämmar signaltransduktion av T-cellsantigenreceptorn. J. Biol. Chem. 273, 12024-12031 (1998).
Le Saux, G. et al. Mekanosensering i nanoskala av naturliga mördarceller avslöjas av antigenfunktionaliserade nanotrådar. Adv. Mater. 31, 1805954 (2019).
Bhingardive, V. et al. Nanotrådsbaserad mekanostimulerande plattform för avstämbar aktivering av naturliga mördarceller. Adv. Funkt. Mater. 31, 2103063 (2021).
Brumbaugh, KM et al. Funktionell roll för Syk-tyrosinkinas i naturlig mördarcell-medierad naturlig cytotoxicitet. J. Exp. Med. 186, 1965-1974 (1997).
Matalon, O. et al. Aktin retrogradt flöde kontrollerar naturliga mördarcellsvar genom att reglera konformationstillståndet för SHP-1. EMBO J. 37, e96264 (2018).
Garrity, D., Call, ME, Feng, J. & Wucherpfennig, KW Den aktiverande NKG2D-receptorn samlas i membranet med två signaleringsdimerer till en hexamerisk struktur. Proc. Natl Acad. Sci. usa 102, 7641-7646 (2005).
Friedman, D. et al. Naturlig mördarcells immunsynapsbildning och cytotoxicitet kontrolleras av spänningen i målgränsytan. J. Cell Sci. 134, jcs258570 (2021).
Yanamandra, AK et al. PIEZO1-medierad mekanosensing styr NK-celldödningseffektiviteten i 3D. Förtryck kl https://doi.org/10.1101/2023.03.27.534435 (2023).
Wan, Z. et al. B-cellsaktivering regleras av styvhetsegenskaperna hos substratet som presenterar antigenerna. J. Immunol. 190, 4661-4675 (2013).
Natkanski, E. et al. B-celler använder mekanisk energi för att urskilja antigenaffiniteter. Vetenskap 340, 1587-1590 (2013).
Merino-Cortés, SV et al. Diacylglycerolkinas ζ främjar ombyggnad av aktincytoskelett och mekaniska krafter vid B-cells immunsynaps. Sci. Signal. 13, eaaw8214 (2020).
Zeng, Y. et al. Substratstyvhet reglerar B-cellsaktivering, proliferation, klassväxling och T-cellsoberoende antikroppssvar in vivo: Cellulärt immunsvar. Eur. J. Immunol. 45, 1621-1634 (2015).
Nowosad, CR, Spillane, KM & Tolar, P. Germinal center B-celler känner igen antigen genom en specialiserad immunsynapsarkitektur. Nat. Immunol. 17, 870-877 (2016).
Jiang, H. & Wang, S. Immunceller använder aktiva dragkrafter för att urskilja affinitet och påskynda evolutionen. Proc. Natl Acad. Sci. usa 120, e2213067120 (2023).
Stanton, RJ et al. HCMV pUL135 omformar aktincytoskelettet för att försämra immunigenkänningen av infekterade celler. Cell värdmikrob 16, 201-214 (2014).
Pai, RK, Convery, M., Hamilton, TA, Boom, WH & Harding, CV Inhibering av IFN-y-inducerat klass II-transaktivatoruttryck av ett 19-kDa lipoprotein från Mycobacterium tuberculosis: en potentiell mekanism för immunundandragande. J. Immunol. 171, 175-184 (2003).
Samassa, F. et al. Shigella försämrar mänskliga T-lymfocyters känslighet genom att kapa aktincytoskelettdynamiken och vesikulär handel med T-cellreceptorer. Cell. Microbiol. 22, e13166 (2020).
Hanc, P. et al. Struktur av komplexet av F-aktin och DNGR-1, en lektinreceptor av C-typ involverad i korspresentation av dendritiska celler av döda cell-associerade antigener. Immunitet 42, 839-849 (2015).
Man, SM et al. Aktinpolymerisation som en viktig medfödd immuneffektormekanism att kontrollera Salmonella infektion. Proc. Natl Acad. Sci. usa 111, 17588-17593 (2014).
Jacobson, EC et al. Migration genom en liten por stör inaktiv kromatinorganisation i neutrofilliknande celler. BMC Biol. 16, 142 (2018).
Solis, AG et al. Mekanosensering av cyklisk kraft av PIEZO1 är avgörande för medfödd immunitet. Natur 573, 69-74 (2019).
Robledo-Avila, FH, Ruiz-Rosado, J., de, D., Brockman, KL & Partida-Sánchez, S. TRPM2-jonkanalen reglerar inflammatoriska funktioner hos neutrofiler under Listeria monocytogenes infektion. Främre. Immunol. 11, 97 (2020).
Meng, KP, Majedi, FS, Thauland, TJ & Butte, MJ Mechanosensing genom YAP styr T-cellsaktivering och metabolism. J. Exp. Med. 217, e20200053 (2020). Denna studie kastar ljus på T-celler som känner av de mekaniska signalerna i sin omgivning och ställer in sitt svar därefter.
Al-Aghbar, MA, Jainarayanan, AK, Dustin, ML & Roffler, SR Samspelet mellan membrantopologi och mekaniska krafter vid reglering av T-cellsreceptoraktivitet. Kommun Biol. 5, 40 (2022).
Wong, VW et al. Mekanisk kraft förlänger akut inflammation via T-cellsberoende vägar under ärrbildning. FASEB J. 25, 4498-4510 (2011).
Chen, DS & Mellman, I. Onkologi möter immunologi: cancer-immunitetscykeln. Immunitet 39, 1-10 (2013).
O'Donnell, JS, Teng, MWL & Smyth, MJ Cancerimmunoredigering och resistens mot T-cellsbaserad immunterapi. Nat. Rev. Clin. Oncol. 16, 151-167 (2019).
Dustin, ML & Long, EO Cytotoxiska immunologiska synapser: NK- och CTL-synapser. Immunol. Varv. 235, 24-34 (2010).
González-Granado, JM et al. Nuclear envelope lamin-A kopplar aktindynamik med immunologisk synapsarkitektur och T-cellsaktivering. Sci. Signal. 7ra37 (2014).
González, C. et al. Nanobody-CD16 catch bond avslöjar NK-cells mekanokänslighet. Biophys. J. 116, 1516-1526 (2019).
Fan, J. et al. NKG2D diskriminerar olika ligander genom selektivt mekanoreglerade ligandkonformationsförändringar. EMBO J. 41, e107739 (2022).
Tsopoulidis, N. et al. T-cellsreceptorutlöst nukleärt aktinnätverksbildning driver CD4+ T-cellseffektorfunktioner. Sci. Immunol. 4, eaav1987 (2019).
Tamzalit, F. et al. Aktinutsprång från gränsytan förstärker mekaniskt dödandet av cytotoxiska T-celler. Sci. Immunol. 4, eaav5445 (2019).
Sanchez, EE et al. Apoptotisk sammandragning driver målcellsfrisättning av cytotoxiska T-celler. Nat. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41590-023-01572-4 (2023).
Händel, C. et al. Cellmembranmjukning i mänskliga bröst- och livmoderhalscancerceller. NJ Phys. 17, 083008 (2015).
Huang, B., Song, B. & Xu, C. Kolesterolmetabolism i cancer: mekanismer och terapeutiska möjligheter. Nat. Metab. 2, 132-141 (2020).
Hanna, RN et al. Patrullerande monocyter kontrollerar tumörmetastaser till lungan. Vetenskap 350, 985-990 (2015).
Vyas, M. et al. Naturliga mördarceller undertrycker cancermetastaser genom att eliminera cirkulerande cancerceller. Främre. Immunol. 13, 1098445 (2023).
Hu, B., Xin, Y., Hu, G., Li, K. & Tan, Y. Flytande skjuvspänning ökar naturliga mördarcellers cytotoxicitet mot cirkulerande tumörceller genom NKG2D-medierad mekanosens. APL Bioeng. 7, 036108 (2023).
Boussommier-Calleja, A. et al. Effekterna av monocyter på extravasation av tumörceller i en 3D-vaskulariserad mikrofluidisk modell. Biomaterial 198, 180-193 (2019).
Soderquest, K. et al. Monocyter styr naturliga mördarcellsdifferentiering till effektorfenotyper. Blod 117, 4511-4518 (2011).
Kumar, BV, Connors, TJ & Farber, DL Human T-cellsutveckling, lokalisering och funktion under hela livet. Immunitet 48, 202-213 (2018).
Surcel, A. et al. Farmakologisk aktivering av myosin II-paraloger för att korrigera cellmekaniska defekter. Proc. Natl Acad. Sci. usa 112, 1428-1433 (2015).
Mittelheisser, V. et al. Optimala fysikalisk-kemiska egenskaper hos antikropp-nanopartikelkonjugat för förbättrad tumörinriktning. Adv. Mater. 34, 2110305 (2022).
Guo, P. et al. Nanopartikelelasticitet styr tumörupptaget. Nat. Commun. 9, 130 (2018).
Liang, Q. et al. Mjukheten hos tumörcellshärledda mikropartiklar reglerar deras läkemedelsleveranseffektivitet. Nat. Biomed. Eng. 3, 729-740 (2019).
Chen, X. et al. Nanopartikelmedierad specifik eliminering av mjuka cancerstamceller genom att rikta in sig på låg cellstyvhet. Acta Biomater. 135, 493-505 (2021).
Perez, JE et al. Övergående cellförstyvning utlöst av magnetisk nanopartikelexponering. J. Nanobioteknik. 19, 117 (2021).
Liu, YX et al. Encellsmekanik ger ett effektivt sätt att undersöka in vivo-interaktioner mellan alveolära makrofager och silvernanopartiklar. J. Phys. Chem. B 119, 15118-15129 (2015).
Binnewies, M. et al. Förstå tumörens immunmikromiljö (TIME) för effektiv terapi. Nat. Med. 24, 541-550 (2018).
Hartmann, N. et al. Den rådande rollen för kontaktvägledning vid intrastromal T-cellsfångning vid human pankreascancer. Clin. Cancer Res. 20, 3422-3433 (2014).
Kuczek, DE et al. Kollagendensitet reglerar aktiviteten hos tumörinfiltrerande T-celler. J. Immunother. Cancer 7, 68 (2019).
Sun, X. et al. Tumör DDR1 främjar kollagenfiberanpassning för att inleda immunförsvar. Natur 599, 673-678 (2021).
Di Martino, JS et al. En tumörhärledd typ III kollagenrik ECM-nisch reglerar tumörcellsvilan. Nat. Cancer 3, 90-107 (2021).
Lampi, MC & Reinhart-King, CA Inriktning på extracellulär matrisstyvhet för att dämpa sjukdom: från molekylära mekanismer till kliniska prövningar. Sci. Översätt. Med. 10, eaao0475 (2018).
Diop-Frimpong, B., Chauhan, VP, Krane, S., Boucher, Y. & Jain, RK Losartan hämmar kollagen I-syntes och förbättrar fördelningen och effektiviteten av nanoterapeutika i tumörer. Proc. Natl Acad. Sci. usa 108, 2909-2914 (2011).
Liu, J. et al. TGF-β-blockad förbättrar fördelningen och effektiviteten av läkemedel vid bröstkarcinom genom att normalisera tumörstroman. Proc. Natl Acad. Sci. usa 109, 16618-16623 (2012).
Van Cutsem, E. et al. Randomiserad fas III-studie av pegvorhyaluronidas alfa med nab-paklitaxel plus gemcitabin för patienter med hyaluronan-högt metastaserande pankreasadenokarcinom. J. Clin. Oncol. 38, 3185-3194 (2020).
Provenzano, PP et al. Enzymatisk inriktning av stroma tar bort fysiska barriärer för behandling av pankreatisk duktal adenokarcinom. Cancercell 21, 418-429 (2012).
Zhong, Y. et al. Tumörmikromiljöaktiverbara nanoenzymer för mekanisk ombyggnad av extracellulär matris och förbättrad tumörkemoterapi. Adv. Funkt. Mater. 31, 2007544 (2021).
Caruana, I. et al. Heparanas främjar tumörinfiltration och antitumöraktivitet hos CAR-omdirigerade T-lymfocyter. Nat. Med. 21, 524-529 (2015).
Prescher, JA, Dube, DH & Bertozzi, CR Kemisk ombyggnad av cellytor hos levande djur. Natur 430, 873-877 (2004).
Meng, D. et al. In situ aktiverad NK-cell som bio-ortogonal riktad levande-cell nanocarrier förstärkt solid tumör immunterapi. Adv. Funkt. Mater. 32, 2202603 (2022).
Zhao, Y. et al. Bioortogonal utrusta CAR-T-celler med hyaluronidas och checkpoint-blockerande antikropp för förbättrad solidtumörimmunterapi. ACS Cent. Sci. 8, 603-614 (2022).
Saatci, O. et al. Inriktning på lysyloxidas (LOX) övervinner kemoterapiresistens vid trippelnegativ bröstcancer. Nat. Commun. 11, 2416 (2020).
Nicolas-Boluda, A. et al. Tumörstyvnande återgång genom kollagen tvärbindande hämning förbättrar T-cellsmigration och anti-PD-1-behandling. Elife 10, e58688 (2021).
De Vita, A. et al. Lysyloxidaskonstruerade lipidnanovesiklar för behandling av trippelnegativ bröstcancer. Sci. Rep. 11, 5107 (2021).
Kim, HY et al. Detektion av lysyloxidasaktivitet i tumörextracellulär matris med användning av peptidfunktionaliserade guldnanosonder. Cancersjukdomar 13, 4523 (2021).
Kanapathipillai, M. et al. Hämning av brösttumörtillväxt med lysyloxidasinriktade nanopartiklar för att modifiera extracellulär matris. Nano Lett. 12, 3213-3217 (2012).
Vennin, C. et al. Övergående vävnadspriming via ROCK-hämning kopplar bort pankreascancerprogression, känslighet för kemoterapi och metastaser. Sci. Översätt. Med. 9, eaai8504 (2017). En övertygande demonstration att förändring av de mekaniska egenskaperna hos tumörmiljön har stor potential för att förbättra terapierna.
Murphy, KJ et al. Intravital avbildningsteknik vägleder FAK-medierad priming i pankreascancer precisionsmedicin enligt Merlin-status. Sci. Adv. 7, eabh0363 (2021).
Tran, E. et al. Immunmålinriktning av fibroblastaktiveringsprotein utlöser igenkänning av multipotenta benmärgsstromaceller och kakexi. J. Exp. Med. 210, 1125-1135 (2013).
Wang, L.-CS et al. Att rikta in sig på fibroblastaktiveringsprotein i tumörstroma med chimära antigenreceptor-T-celler kan hämma tumörtillväxt och förstärka värdimmuniteten utan allvarlig toxicitet. Cancerimmunol. Res. 2, 154-166 (2014).
Rurik, JG et al. CAR T-celler producerade in vivo för att behandla hjärtskada. Vetenskap 375, 91-96 (2022).
Correia, AL et al. Hepatiska stellatceller undertrycker NK-cellsuppehållen bröstcancervila. Natur 594, 566-571 (2021).
Roberts, EW et al. Utarmning av stromaceller som uttrycker fibroblastaktiveringsprotein-α från skelettmuskulatur och benmärg resulterar i kakexi och anemi. J. Exp. Med. 210, 1137-1151 (2013).
Fujimori, K., Covell, DG, Fletcher, JE & Weinstein, JN Modelleringsanalys av den globala och mikroskopiska fördelningen av immunglobulin G, F(ab')2 och Fab i tumörer. Cancer Res. 49, 5656-5663 (1989).
Tabdanov, ED et al. Konstruera T-celler för att förbättra 3D-migrering genom strukturellt och mekaniskt komplexa tumörmikromiljöer. Nat. Commun. 12, 2815 (2021).
Whitlock, B. Förbättra cytotoxisk T-cellsdöd genom PTEN-utarmning (Weill Cornell Medicine, 2018).
Li, R., Ma, C., Cai, H. & Chen, W. CAR T-cellsmekanoimmunologin i korthet. Adv. Sci. 7, 2002628 (2020).
Chockley, P. J., Ibanez-Vega, J., Krenciute, G., Talbot, L. J. & Gottschalk, S. Synaps-tuned CARs förbättrar immuncells antitumöraktivitet. Nat. Bioteknik. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01650-2 (2023). Denna studie visar att förbättring av den immunologiska synapsarkitekturen hos CAR-NK-celler leder till överlägsen terapeutisk effekt.
Roybal, K.T. et al. Precision tumörigenkänning av T-celler med kombinatoriska antigenavkännande kretsar. Cell 164, 770-779 (2016).
Gordon, WR et al. Mekanisk allosteri: bevis för ett kraftbehov i den proteolytiska aktiveringen av notch. Dev. Cell 33, 729-736 (2015).
Sloas, DC, Tran, JC, Marzilli, AM & Ngo, JT Spänningsavstämda receptorer för syntetisk mekanotransduktion och intercellulär kraftdetektering. Nat. Bioteknik. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01638-y (2023).
Mittelheisser, V. et al. Utnyttja immunterapi med nanomedicin. Adv. Ther. 3, 2000134 (2020).
Perica, K. et al. Magnetfältsinducerad T-cellreceptorklustring av nanopartiklar förbättrar T-cellsaktivering och stimulerar antitumöraktivitet. ACS Nano 8, 2252-2260 (2014).
Majedi, FS et al. Förstärkning av T-cellsaktivering genom oscillerande krafter och konstruerade antigenpresenterande celler. Nano Lett. 19, 6945-6954 (2019).
Vis, B. et al. Ultrasmå kiseldioxidnanopartiklar ligerar direkt T-cellsreceptorkomplexet. Proc. Natl Acad. Sci. usa 117, 285-291 (2020).
Kim, K.-S. et al. Katjonisk nanopartikelmedierad aktivering av naturliga mördarceller för effektiv cancerimmunterapi. ACS Appl. Mater. gränssnitt 12, 56731-56740 (2020).
Sim, T. et al. Magnetoaktivering och magnetisk resonansavbildning av naturliga mördarceller märkta med magnetiska nanokomplex för behandling av solida tumörer. ACS Nano 15, 12780-12793 (2021).
Liu, Z. et al. Optomekaniska ställdon i nanoskala för att kontrollera mekanotransduktion i levande celler. Nat. metoder 13, 143-146 (2016).
Farhadi, A., Ho, GH, Sawyer, DP, Bourdeau, RW & Shapiro, MG Ultraljudsavbildning av genuttryck i däggdjursceller. Vetenskap 365, 1469-1475 (2019).
Wang, X., Chen, X. & Yang, Y. Spatiotemporal kontroll av genuttryck genom ett ljusomkopplingsbart transgensystem. Nat. metoder 9, 266-269 (2012).
Pan, Y. et al. Mekanogenetik för fjärrkontroll och icke-invasiv kontroll av cancerimmunterapi. Proc. Natl Acad. Sci. usa 115, 992-997 (2018).
González-Bermúdez, B., Guinea, GV & Plaza, GR Framsteg inom mikropipettaspiration: tillämpningar inom cellbiomekanik, modeller och utökade studier. Biophys. J. 116, 587-594 (2019).
Otto, O. et al. Deformerbarhetscytometri i realtid: mekanisk fenotypning av celler i farten. Nat. metoder 12, 199-202 (2015). Introduktion av den senaste RT-DC-tekniken med hög genomströmning för mätning av cellers mekaniska egenskaper.
Gerum, R. et al. Viskoelastiska egenskaper hos suspenderade celler mätt med skjuvflödesdeformationscytometri. Elife 11, e78823 (2022).
Sánchez-Iranzo, H., Bevilacqua, C., Diz-Muñoz, A. & Prevedel, R. En 3D Brillouin-mikroskopuppsättning av zebrafiskögat in vivo. Datakort. 30, 105427 (2020).
Conrad, C., Gray, KM, Stroka, KM, Rizvi, I. & Scarcelli, G. Mekanisk karakterisering av 3D-äggstockscancerknölar med Brillouin-konfokalmikroskopi. Cell. Mol. Bioeng. 12, 215-226 (2019).
Wu, P.-H. et al. Partikelspårning av cancercellers mikroreologi hos levande försökspersoner. Mater. I dag 39, 98-109 (2020).
Falchuk, K. & Berliner, R. Hydrostatiska tryck i peritubulära kapillärer och tubuli i råttnjuren. Am. J. Physiol. 220, 1422-1426 (1971).
Petrie, RJ & Koo, H. Direkt mätning av intracellulärt tryck. Curr. Protoc. Cell Biol. 63(2014).
Harlepp, S., Thalmann, F., Follain, G. & Goetz, JG Hemodynamiska krafter kan noggrant mätas in vivo med en optisk pincett. Mol. Biol. Cell 28, 3252-3260 (2017).
Mongera, A. et al. En vätske-till-fast stoppövergång ligger bakom ryggradskroppens axelförlängning. Natur 561, 401-405 (2018).
Mongera, A. et al. Mekanik för den cellulära mikromiljön som undersökts av celler in vivo under zebrafisks presomitiska mesodermdifferentiering. Nat. Mater. 22, 135-143 (2023).
Vorselen, D. et al. Mikropartikeldragkraftsmikroskopi avslöjar subcellulära kraftansträngningsmönster i interaktioner mellan immunceller och mål. Nat. Commun. 11, 20 (2020).
Meng, F., Suchyna, TM & Sachs, F. En fluorescensenergiöverföringsbaserad mekanisk stresssensor för specifika proteiner in situ: mekanisk stresssensor. FEBS J. 275, 3072-3087 (2008).
Grashoff, C. et al. Att mäta mekanisk spänning över vinkulin avslöjar reglering av fokal vidhäftningsdynamik. Natur 466, 263-266 (2010).
Conway, DE et al. Vätskeskjuvspänning på endotelceller modulerar mekanisk spänning över VE-cadherin och PECAM-1. Curr. Biol. 23, 1024-1030 (2013).
Pan, X. et al. Bedömning av migration av cancerceller med hjälp av en viskositetskänslig fluorescerande sond. Chem. Kommun. 58, 4663-4666 (2022).
Shimolina, LE et al. Avbildning av tumörmikroskopisk viskositet in vivo med hjälp av molekylära rotorer. Sci. Rep. 7, 41097 (2017).
Sack, I. Magnetisk resonanselastografi från grundläggande mjukvävnadsmekanik till diagnostisk avbildning. Nat. Rev Phys. 5, 25-42 (2022).
Soteriou, D. et al. Snabb encellig fysikalisk fenotypning av mekaniskt dissocierade vävnadsbiopsier. Nat. Biomed. Eng. https://doi.org/10.1038/s41551-023-01015-3 (2023).
- SEO-drivet innehåll och PR-distribution. Bli förstärkt idag.
- PlatoData.Network Vertical Generative Ai. Styrka dig själv. Tillgång här.
- PlatoAiStream. Web3 Intelligence. Kunskap förstärkt. Tillgång här.
- Platoesg. Kol, CleanTech, Energi, Miljö, Sol, Avfallshantering. Tillgång här.
- PlatoHealth. Biotech och kliniska prövningar Intelligence. Tillgång här.
- Källa: https://www.nature.com/articles/s41565-023-01535-8
