Klotter, V.et al. 간 경직의 병리학적 증가를 평가하면 CFLD의 조기 진단이 가능합니다. 전향적 종단적 코호트 연구 결과입니다. PLoS ONE 12, e0178784 (2017).
Medrano, LM 외. 간 경직의 증가는 HIV/C형 간염 바이러스 동시 감염 환자의 염증 및 면역 활성화에 대한 바이오마커 증가와 관련이 있습니다. 에이즈 32, 1095-1105 (2018).
Tomlin, H. & Piccinini, AM 세포외 기질과 미생물 병원체에 대한 선천적 면역 반응 사이의 복잡한 상호 작용. 면역학 155, 186-201 (2018).
마르티네즈-비달, L. 외. 비뇨기과의 조직 강성과 임상적 관련성에 대한 원인 기여자. 통신. 바이올. 4, 1011 (2021).
Mohammadi, H. & Sahai, E. 변경된 종양 역학의 메커니즘 및 영향. Nat. 세포 바이오 올. 20, 766-774 (2018).
Du, H. et al. 조직 기계적 변환을 통해 면역성을 조정합니다. Nat. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41577-022-00761-w (2022).
Zhu, C., Chen, W., Lou, J., Rittase, W. & Li, K. 면역 수용체를 통한 기계 감지. Nat. 면역. 20, 1269-1278 (2019).
Judokusumo, E., Tabdanov, E., Kumari, S., Dustin, ML & Kam, LC T 림프구 활성화의 기계 감지. 생물 물리학. 제이 102, L5–L7(2012).
O'Connor, RSet al. 기질 강성은 인간 T 세포 활성화 및 증식을 조절합니다. J. 면역. 189, 1330-1339 (2012).
Saitakis, M.et al. 다양한 TCR 유발 T 림프구 반응은 다양한 민감도의 강성에 의해 강화됩니다. eLife 6, e23190 (2017).
Blumenthal, D., Chandra, V., Avery, L. & Burkhardt, JK 마우스 T 세포 프라이밍은 수지상 세포 피질의 성숙에 따른 강화에 의해 강화됩니다. eLife 9, e55995 (2020). T 세포의 수지상 세포 매개 활성화의 기계적 측면을 밝히는 중요한 연구입니다.
Basu, R.et al. 세포독성 T 세포는 기계적 힘을 사용하여 표적 세포 살해를 강화합니다. 세포 165, 100-110 (2016). T 세포의 세포 독성 활동에서 기계적 힘의 중요한 역할을 강조하는 중요한 연구입니다.
Liu, Y. et al. 세포의 부드러움은 종양 재증식 세포의 세포용해성 T 세포 사멸을 방지합니다. Cancer Res. 81, 476-488 (2021).
Tello-Lafoz, M. et al. 세포독성 림프구는 암의 특징적인 생물물리학적 취약성을 표적으로 삼습니다. 면제 54, 1037–1054.e7(2021).
Lei, K.et al. 콜레스테롤 고갈을 통한 암세포 강화는 입양 T 세포 면역요법을 향상시킵니다. Nat. 생체. 영어 5, 1411-1425 (2021). MRTF를 표적으로 하는 유전자 조작을 통해 또는 세포막의 콜레스테롤을 고갈시켜 종양 세포를 경화시키면 T 세포 매개 살해에 대한 취약성이 더 높아진다는 것을 보여주는 영향력 있는 연구(참조 14,15, XNUMX).
Provenzano, PP 외. 종양-기질 경계면에서의 콜라겐 재구성은 국소 침입을 촉진합니다. BMC Med. 4, 38 (2006).
Levental, KRet al. 매트릭스 가교는 인테그린 신호 전달을 강화하여 종양 진행을 강제합니다. 세포 139, 891-906 (2009).
괴츠(Goetz), JG 외. 간질 카베올린-1에 의한 미세환경의 생체역학적 리모델링은 종양 침입과 전이를 선호합니다. 세포 146, 148-163 (2011).
Massagué, J. TGFβ(암). 세포 134, 215-230 (2008).
Insua‐Rodríguez, J. 외. 유방암 세포의 스트레스 신호는 화학 저항성 전이를 촉진하는 매트릭스 구성 요소를 유도합니다. 엠보 몰. 메드. 10, e9003 (2018).
그, X. et al. 세포외 기질의 물리적 특성은 종양 미세환경에서 나노입자의 확산을 지배합니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 120, e2209260120 (2023).
연어, H. 외. 매트릭스 아키텍처는 인간 폐 종양의 간질로 T 세포의 우선적인 위치 파악 및 이동을 정의합니다. 제이 CLIN. 투자. 122, 899-910 (2012).
Salnikov, AV 등. 종양 간질액 압력을 낮추는 것은 특히 화학요법의 효능을 증가시킵니다. FASEB J. 17, 1756-1758 (2003).
Guck, J. et al. 악성 변형 및 전이 능력을 테스트하기 위한 고유한 세포 마커로서의 광학적 변형성. 생물 물리학. 제이 88, 3689-3698 (2005).
Plodinec, M. et al. 유방암의 나노역학적 특징. Nat. 나노 테크 놀. 7, 757-765 (2012).
Chen, Y., McAndrews, KM & Kalluri, R. 암 관련 섬유아세포의 임상 및 치료 관련성. Nat. Clin 목사. Oncol. 18, 792-804 (2021).
Gensbittel, V.et al. 전이에서 종양 세포의 기계적 적응성. Dev. 세포 56, 164-179 (2021). 이 리뷰는 종양 세포가 전이 과정 전반에 걸쳐 기계적 특성을 조정한다는 가설을 제시합니다.
Lv, J. et al. 세포의 부드러움은 암세포의 종양원성과 줄기성을 조절합니다. EMBO J. 40, e106123 (2021).
매튜스, HK 외. 발암성 신호전달은 감금 상태에서 세포 분열을 촉진하기 위해 세포 모양과 메커니즘을 변경합니다. Dev. 세포 52, 563–573.e3(2020).
영, KM 외. 전이성 표현형을 조사하기 위해 단일 세포 수준에서 기계적 데이터와 유전자 발현 데이터의 상관관계를 분석합니다. 아이사이언스 26, 106393 (2023).
Rianna, C., Radmacher, M. & Kumar, S. 제한된 공간을 탐색할 때 종양 세포가 부드러워진다는 직접적인 증거. Mol. Biol. 세포 31, 1726-1734 (2020).
Regmi, S., Fu, A. & Luo, KQ 운동 조건에서 높은 전단 응력은 미세유체 시스템에서 순환하는 종양 세포를 파괴합니다. Sci. 대표. 7, 39975 (2017).
무스, DL et al. 암세포는 rhoa/actomyosin 의존성 기계적 적응을 통해 순환계의 기계적 파괴에 저항합니다. 세포 담당자 30, 3864–3874.e6(2020).
Chen, J. et al. 종양 재증식 세포의 효율적인 혈관 외 유출은 세포 변형성에 달려 있습니다. Sci. 대표. 6, 19304 (2016).
Saito, D.et al. 원시 생식 세포의 강성은 조류 배아의 유출을 위해 필요합니다. 아이사이언스 25, 105629 (2022).
어, EEet al. 파종된 암세포에 의한 혈관주위세포 유사 확산은 전이성 집락화를 위해 YAP 및 MRTF를 활성화합니다. Nat. 세포 바이오 올. 20, 966-978 (2018).
Wen, Z., Zhang, Y., Lin, Z., Shi, K. & Jiu, Y. 세포골격 - 코로나바이러스 감염을 위한 숙주 세포의 중요한 열쇠입니다. J.Mol. 셀. Biol. 12, 968-979 (2021).
Paluck, A. et al. RSV 감염에서 ARP2/3 복합체 기반 액틴 중합의 역할. 병원균 11, 26 (2021).
Kubánková, M. 외. 코로나19에서는 혈액 세포의 물리적 표현형이 변경됩니다. 생물 물리학. 제이 120, 2838-2847 (2021).
Yang, J., Barrila, J., Roland, KL, Ott, CM & Nickerson, CA 생리학적 유체 전단은 침습성 다약제 내성 비장티푸스의 병독성 잠재력을 변경합니다. 살모넬라 티피 무리 움 D23580. npj 미세 중력 2, 16021 (2016).
Padron, GCet al. 전단 속도는 박테리아 병원체를 H에 민감하게 만듭니다.2O2 스트레스. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 120, e2216774120 (2023).
Mikaty, G.et al. 세포외 세균 병원체는 전단 응력에 저항하기 위해 숙주 세포 표면 재구성을 유도합니다. PLoS Pathog. 5, e1000314 (2009).
Kuo, C. et al. 리노바이러스 감염은 천식 및 비천식성 기도 평활근 세포에서 세포외 기질 단백질 침착을 유도합니다. 오전. J. Physiol. 폐세포. 몰. 생리. 300, L951–L957(2011).
Nagy, N.et al. 면역 조절 장애 및 자가 면역 질환에 대한 히알루로난. 매트릭스 비올. 78-79, 292-313 (2019).
Fingleton, B. 염증 과정의 조절인자로서의 매트릭스 금속단백분해효소. 비오킴. 생물 물리학. 액타몰. 세포 해상도 1864, 2036-2042 (2017).
Krishnamurty, AT & Turley, SJ 림프절 간질 세포: 면역 체계의 지도 제작자. Nat. 면역. 21, 369-380 (2020).
Wynn, TA 폐섬유증의 메커니즘 통합. J. Exp. Med. 208, 1339-1350 (2011).
Tschöpe, C. et al. 심근염 및 염증성 심근병증: 현재의 증거와 미래의 방향. Nat. Cardiol 목사. 18, 169-193 (2021).
Fabre, T.et al. 제3형 염증에 의해 유발된 광범위한 섬유화 대식세포 하위 집합의 확인. 과학. 면역. 8, eadd8945(2023).
드 보어, RA 등. 심부전의 섬유증에 대한 더 나은 정의, 정량화 및 치료를 지향합니다. 유럽 심장학회 산하 심부전 협회(HFA) 중개 연구 위원회의 과학 로드맵. 유로 J. 하트 페일. 21, 272-285 (2019).
Liu, F. et al. 기질 강화 및 COX-2 억제를 통한 섬유증의 피드백 증폭. J. Cell Biol. 190, 693-706 (2010).
Georges, PCet al. 쥐 간의 강성이 증가하면 기질 침착이 발생합니다. 섬유증에 영향을 미칩니다. 오전. J. Physiol. 위장병. 간 피지올. 293, G1147–G1154(2007).
Stock, KFet al. 신장 이식 섬유증 진단을 위한 조직학과 비교한 ARFI 기반 조직 탄력성 정량화. 클린. 혈혈. 마이크로서클 46, 139-148 (2010).
Gadd, VLet al. 인간 비알코올성 지방간 질환에서 문맥 염증성 침윤 및 관성 반응. 대한 간 59, 1393-1405 (2014).
Mogilenko, DA, Shchukina, I. & Artyomov, MN 단일 세포 분해능에서의 면역 노화. Nat. Immunol. 22, 484-498 (2022).
로마, MJ 외. 만성 염증성 질환의 동맥 경화. 고혈압 46, 194-199 (2005).
Klingberg, F., Hinz, B. & White, ES 근섬유아세포 매트릭스: 조직 복구 및 섬유증에 대한 영향: 근섬유아세포 매트릭스. J. 파톨. 229, 298-309 (2013).
Liu, F. et al. YAP 및 TAZ를 통한 기계 신호 전달은 섬유아세포 활성화 및 섬유증을 유발합니다. 오전. J. Physiol. 폐세포. 몰. 생리. 308, L344–L357(2015).
Tomasek, JJ, Gabbiani, G., Hinz, B., Chaponnier, C. & Brown, RA 근섬유아세포 및 결합 조직 리모델링의 기계적 조절. Nat. Mol. Cell Biol. 3, 349-363 (2002).
Munger, JSet al. 폐 염증 및 섬유증을 조절하는 메커니즘: 인테그린 αvβ6은 잠재 TGF β1에 결합하여 활성화합니다. 세포 96, 319-328 (1999).
Santos, A. & Lagares, D. 매트릭스 강성: 장기 섬유증의 지휘자. 현재 류마톨. 대표. 20, 2 (2018).
Morvan, MG & Lanier, LL NK 세포와 암: 선천적 세포에 새로운 기술을 가르칠 수 있습니다. 냇. 목사 암 16, 7-19 (2016).
Janeway, CA 면역체계가 숙주를 감염으로부터 보호하기 위해 어떻게 작동하는지: 개인적인 견해. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 98, 7461-7468 (2001).
Dustin, ML 면역학적 시냅스와 키냅스를 통한 T 세포 활성화. Immunol. 신부님. 221, 77-89 (2008).
Feng, Y., Zhao, X., White, AK, Garcia, KC & Fordyce, PM T 세포 활성화의 순서 및 힘 의존성의 고처리량 매핑을 위한 비드 기반 방법. Nat. 행동 양식 19, 1295-1305 (2022).
Mordechay, L.et al. 자연살해세포의 세포독성 활성을 기계적으로 조절합니다. ACS 바이오 매터. 공상 과학 영어 7, 122-132 (2021).
Lei, K., Kurum, A. & Tang, L. 치료 적용을 위한 T 세포의 기계적 면역공학. Acc. 화학 입술 53, 2777-2790 (2020). 기계적 면역공학의 최근 발전과 잠재적인 치료 적용에 대한 종합적인 검토입니다.
Seghir, R. & Arscott, S. 유연한 시스템을 위한 확장된 PDMS 강성 범위. 민감한 액추에이터 Phys. 230, 33-39 (2015).
Guimarães, CF, Gasperini, L., Marques, AP & Reis, RL 살아있는 조직의 강성과 조직 공학에 대한 영향. Nat. 교황 5, 351-370 (2020).
Denisin, AK & Pruitt, BL 기계생물학 응용 분야를 위한 폴리아크릴아미드 겔 강성 범위를 조정합니다. ACS Appl. 교인. 인터페이스 8, 21893-21902 (2016).
Geissmann, F.et al. 단핵구, 대식세포, 수지상 세포의 발달. 과학 327, 656-661 (2010).
Folain, G.et al. 종양 이동 시 체액 및 그 역학: 전이 형성. 냇. 목사 암 20, 107-124 (2020).
Baratchi, S.et al. 경피적 대동맥 판막 이식은 전단 응력으로 인한 피에조-1 매개 단핵구 활성화의 감소를 통한 항염증 치료법을 나타냅니다. 순환 142, 1092-1105 (2020).
Serafini, N.et al. TRPM4 채널은 패혈증의 생존 기능을 제어하지만 호중구는 아닌 단핵구와 대식세포를 제어합니다. J. 면역. 189, 3689-3699 (2012).
Beningo, KA & Wang, Y. Fc 수용체 매개 식세포 작용은 표적의 기계적 특성에 의해 조절됩니다. J. Cell Sci. 115, 849-856 (2002).
Sosale, NGet al. 세포 강성과 모양은 미오신-II를 과다활성화하여 식균 작용에서 CD47의 '자기' 신호를 무시합니다. 피 125, 542-552 (2015).
Sridharan, R., Cavanagh, B., Cameron, AR, Kelly, DJ & O'Brien, FJ 재료 강성은 대식세포의 분극 상태, 기능 및 이동 모드에 영향을 미칩니다. 액타 바이오마터. 89, 47-59 (2019).
Hu, Y. et al. 분자력 영상은 인테그린 의존성 기계적 체크포인트가 대식세포에서 Fcγ 수용체 매개 식세포작용을 조절한다는 것을 보여줍니다. 나노 렛트. 23, 5562-5572 (2023).
Atcha, H.et al. 기계적으로 활성화된 이온 채널 Piezo1은 대식세포 분극 및 강성 감지를 조절합니다. Nat. 코뮌. 12, 3256 (2021).
Geng, J.et al. Piezo4을 통한 TLR1 신호 전달은 박테리아 감염 중에 대식세포 매개 숙주 반응에 관여하고 향상시킵니다. Nat. 코뮌. 12, 3519 (2021).
Dupont, S.et al. 기계적 변환에서 YAP/TAZ의 역할. 자연 474, 179-183 (2011).
라이스, AJ 외. 매트릭스 강성은 상피-중간엽 전이를 유도하고 췌장암 세포의 화학 저항성을 촉진합니다. 종양 6, e352 (2017).
Oliver-De La Cruz, J. 외. 기질 역학은 세포 확산을 지시하여 YAP 인산화를 통해 지방 생성을 제어합니다. 생체 적합 물질 205, 64-80 (2019).
Meli, VSet al. YAP 매개 mechanotransduction은 대 식세포 염증 반응을 조정합니다. 과학. 고급. 6, eabb8471(2020).
Steinman, RM 수지상 세포에 관한 결정: 과거, 현재, 미래. Annu. Immunol 목사. 30, 1-22 (2012).
Moreau, HDet al. 거대음작용은 수력 저항으로 인한 수지상 세포의 방향성 편향을 극복하고 우주 탐사를 촉진합니다. Dev. 세포 49, 171–188.e5(2019).
Laplaud, V. et al. 살아있는 세포의 피질을 꼬집으면 미오신 II 모터로 인한 두께 불안정성이 드러납니다. 공상 과학 Adv. 7, eabe3640(2021).
Barbier, L.et al. 미오신 II 활성은 성숙한 수지상 세포의 고도로 제한된 미세 환경에서의 이동을 위해 선택적으로 필요합니다. 앞. 면역. 10, 747 (2019).
Chabaud, M.et al. 세포 이동과 항원 포획은 수지상 세포에서 미오신 II에 의해 결합되는 길항 과정입니다. Nat. 코뮌. 6, 7526 (2015).
Leithner, A. et al. 수지상 세포 액틴 역학은 면역학적 시냅스에서 접촉 지속 시간과 프라이밍 효율을 제어합니다. J. Cell Biol. 220, e202006081 (2021).
강J.-H. 외. 생체역학적 힘은 골수 유래 수지상 세포의 직접적인 이동과 활성화를 향상시킵니다. Sci. 대표. 11, 12106 (2021).
반 덴 드리스(van den Dries), K. 외. 수지상 세포에 의한 기하학적 감지는 공간적 구성과 PGE2에 의한 포도솜의 용해를 지시합니다. 셀. 몰. 생활과학. 69, 1889-1901 (2012).
Chakraborty, M.et al. 기계적 강성은 수지상 세포의 대사와 기능을 제어합니다. 세포 담당자 34, 108609 (2021).
Mennens, SFB 외. 기질 강성은 인간 항원 제시 수지상 세포의 표현형과 기능에 영향을 미칩니다. Sci. 대표. 7, 17511 (2017).
Figdor, CG, van Kooyk, Y. & Adema, GJ 수지상 세포 및 랑게르한스 세포의 C형 렉틴 수용체. Nat. Immunol. 2, 77-84 (2002).
Bufi, N.et al. 인간의 일차 면역 세포는 염증에 의해 변형되는 뚜렷한 기계적 특성을 나타냅니다. 생물 물리학. 제이 108, 2181-2190 (2015).
Comrie, WA, Babich, A. & Burkhardt, JK F-액틴 흐름은 면역학적 시냅스에서 LFA-1의 친화도 성숙 및 공간 구성을 유도합니다. J. Cell Biol. 208, 475-491 (2015).
Wang, Y. et al. 수지상 세포 Piezo1은 T의 분화를 지시합니다H1과 티등록 번호 암세포. eLife 11, e79957 (2022).
Valignat, M.-P. 외. 림프구는 바람개비 유로포드를 사용하여 수동적으로 자체 조종할 수 있습니다. Nat. 코뮌. 5, 5213 (2014).
Roy, NH, MacKay, JL, Robertson, TF, Hammer, DA & Burkhardt, JK Crk 어댑터 단백질은 인테그린 LFA-1에 의해 유도된 액틴 의존성 T 세포 이동 및 기계 감지를 중재합니다. Sci. 신호. 11eaat3178 (2018)입니다.
희망, JM 외. 유체 전단 응력은 Piezo1을 통해 T 세포 활성화를 향상시킵니다. BMC Biol. 20, 61 (2022).
Husson, J., Chemin, K., Bohineust, A., Hivroz, C. & Henry, N. T 세포 수용체 결합 시 강제 생성. PLoS ONE 6, e19680 (2011). 항원 제시 세포와 결합할 때 T 세포가 가하는 힘을 측정하기 위한 생체막 힘 프로브 기술의 우아한 사용.
Liu, B., Chen, W., Evavold, BD & Zhu, C. TCR과 작용제 펩타이드-MHC 사이의 동적 캐치 결합 축적은 T 세포 신호 전달을 유발합니다. 세포 157, 357-368 (2014).
Thauland, TJ, Hu, KH, Bruce, MA & Butte, MJ 세포골격 적응성은 T 세포 수용체 신호 전달을 조절합니다. Sci. 신호. 10, eaah3737(2017).
Gaertner, F.et al. WASp는 기계감응성 액틴 패치를 유발하여 치밀한 조직에서 면역 세포 이동을 촉진합니다. Dev. 세포 57, 47–62.e9(2022).
Majedi, FSet al. T세포 활성화는 3차원 기계적 미세환경에 의해 조절됩니다. 생체 적합 물질 252, 120058 (2020).
Wang, H. et al. ZAP-70: T 세포 신호 전달에 필수적인 키나제. 콜드 스프링 하브. 관점. Biol. 2, a002279(2010).
Bashour, KTet al. CD28과 CD3은 T 세포 견인력에서 보완적인 역할을 합니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 111, 2241-2246 (2014).
Hu, KH & Butte, MJ T 세포 활성화에는 힘 생성이 필요합니다. J. Cell Biol. 213, 535-542 (2016).
Liu, Y. et al. DNA 기반 나노입자 장력 센서는 T 세포 수용체가 향상된 충실도를 위해 정의된 pN 힘을 항원에 전달한다는 것을 보여줍니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 113, 5610-5615 (2016).
Tabdanov, E.et al. TCR 및 LFA-1 리간드의 마이크로패터닝은 T 세포의 세포골격 역학에 대한 보완적인 효과를 나타냅니다. 통합 바이올. 7, 1272-1284 (2015).
Govendir, MA et al. T 세포 세포골격의 힘은 퍼포린의 막 곡률 편향을 통해 표적 용해를 위한 시냅스 지형을 형성합니다. Dev. 세포 57, 2237–2247.e8(2022).
왕(Wang), MS 외. 기계적으로 활성인 인테그린은 면역 시냅스에서 용해성 분비를 표적으로 삼아 세포의 세포독성을 촉진합니다. Nat. 코뮌. 13, 3222 (2022).
Liu, CSCet al. 최첨단: Piezo1 기계 센서는 인간 T 세포 활성화를 최적화합니다. J. 면역. 200, 1255-1260 (2018).
Jin, W. et al. T 세포 활성화 및 면역 시냅스 조직은 구조화된 표면의 미세 역학에 반응합니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 116, 19835-19840 (2019).
Kumari, S.et al. 세포골격 장력은 이동성 T 세포 시냅스 접촉을 적극적으로 유지합니다. EMBO J. 39, e102783 (2020).
Huby, RDJ, Weiss, A. & Ley, SC Nocodazole은 T 세포 항원 수용체에 의한 신호 전달을 억제합니다. J. Biol. Chem. 273, 12024-12031 (1998).
Le Saux, G.et al. 자연 살해 세포의 나노 규모 기계 감지는 항원 기능화 나노와이어에 의해 밝혀졌습니다. Adv. 교인. 31, 1805954 (2019).
Bhingardive, V. et al. 자연 살해 세포의 조정 가능한 활성화를 위한 나노와이어 기반 기계 자극 플랫폼. Adv. 기능 교인. 31, 2103063 (2021).
Brumbaugh, KMet al. 자연 살해 세포 매개 자연 세포 독성에서 Syk 티로신 키나제의 기능적 역할. J. Exp. Med. 186, 1965-1974 (1997).
Matalon, O.et al. 액틴 역행 흐름은 구조 상태를 조절하여 자연 살해 세포 반응을 제어합니다. Xogar Coidar dun pequeno pônei-1. EMBO J. 37, e96264 (2018).
Garrity, D., Call, ME, Feng, J. & Wucherpfennig, KW 활성화된 NKG2D 수용체는 XNUMX개의 신호 이량체와 함께 막에 조립되어 XNUMX량체 구조를 형성합니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 102, 7641-7646 (2005).
프리드먼(Friedman), D. 외. 자연살해세포의 면역 시냅스 형성과 세포독성은 표적 경계면의 장력에 의해 조절됩니다. J. Cell Sci. 134, jcs258570(2021).
Yanamandra, AK et al. PIEZO1 매개 기계 감지는 3D에서 NK 세포 살상 효율을 제어합니다. 사전 인쇄 시간: https://doi.org/10.1101/2023.03.27.534435 (2023).
Wan, Z. et al. B 세포 활성화는 항원을 제시하는 기질의 강성 특성에 의해 조절됩니다. J. 면역. 190, 4661-4675 (2013).
Natkanski, E.et al. B 세포는 기계적 에너지를 사용하여 항원 친화성을 구별합니다. 과학 340, 1587-1590 (2013).
메리노-코르테스(Merino-Cortés), SV 외. 디아실글리세롤 키나제 ζ는 B 세포 면역 시냅스에서 액틴 세포골격 재형성 및 기계적 힘을 촉진합니다. Sci. 신호. 13, eaaw8214(2020).
Zeng, Y.et al. 기질 강성은 생체 내에서 B 세포 활성화, 증식, 클래스 전환 및 T 세포 독립적 항체 반응을 조절합니다. 세포 면역 반응. 유로 J. Immunol. 45, 1621-1634 (2015).
Nowosad, CR, Spillane, KM & Tolar, P. Germinal center B 세포는 특화된 면역 시냅스 구조를 통해 항원을 인식합니다. Nat. 면역. 17, 870-877 (2016).
Jiang, H. & Wang, S. 면역 세포는 활성 잡아당김 힘을 사용하여 친화력을 구별하고 진화를 가속화합니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 120, e2213067120 (2023).
Stanton, RJet al. HCMV pUL135는 액틴 세포골격을 리모델링하여 감염된 세포의 면역 인식을 손상시킵니다. 세포 숙주 미생물 16, 201-214 (2014).
Pai, RK, Convery, M., Hamilton, TA, Boom, WH & Harding, CV 19-kDa 지질단백질에 의한 IFN-γ 유발 클래스 II transactivator 발현 억제 Mycobacterium 결핵: 면역 회피를 위한 잠재적인 메커니즘. J. 면역. 171, 175-184 (2003).
Samassa, F.et al. 시겔 액틴 세포골격 역학 및 T 세포 수용체 소포성 트래피킹을 가로채어 인간 T 림프구 반응성을 손상시킵니다. 셀. 미생물. 22, e13166 (2020).
Hanč, P. et al. F-액틴과 죽은 세포 관련 항원의 수지상 세포 교차 제시에 관여하는 C형 렉틴 수용체인 DNGR-1 복합체의 구조. 면제 42, 839-849 (2015).
남자, SM 외. 제어하는 주요 선천적 면역 효과기 메커니즘으로서의 액틴 중합 살모넬라 균 감염. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 111, 17588-17593 (2014).
Jacobson, EC 외. 작은 기공을 통한 이동은 호중구 유사 세포의 비활성 염색질 조직을 방해합니다. BMC Biol. 16, 142 (2018).
Solis, AGet al. PIEZO1에 의한 순환력의 기계적 감각은 선천적 면역에 필수적입니다. 자연 573, 69-74 (2019).
Robledo-Avila, FH, Ruiz-Rosado, J., de, D., Brockman, KL & Partida-Sánchez, S. TRPM2 이온 채널은 호중구의 염증 기능을 조절합니다. 리스테리아 감염. 앞. 면역. 11, 97 (2020).
Meng, KP, Majedi, FS, Thauland, TJ & Butte, MJ YAP를 통한 기계 감지는 T 세포 활성화 및 대사를 제어합니다. J. Exp. Med. 217, e20200053 (2020). 이 연구는 환경의 기계적 신호를 감지하고 그에 따라 반응을 조정하는 T 세포에 대해 조명합니다.
Al-Aghbar, MA, Jainarayanan, AK, Dustin, ML & Roffler, SR T 세포 수용체 활동 조절에 있어 막 토폴로지와 기계적 힘 사이의 상호 작용. 통신. 바이올. 5, 40 (2022).
웡(Wong), 폭스바겐 외. 기계적 힘은 흉터 형성 중 T 세포 의존 경로를 통해 급성 염증을 연장시킵니다. FASEB J. 25, 4498-4510 (2011).
Chen, DS & Mellman, I. 종양학과 면역학이 만났습니다: 암-면역 주기. 면제 39, 1-10 (2013).
O'Donnell, JS, Teng, MWL & Smyth, MJ 암 면역편집 및 T 세포 기반 면역요법에 대한 내성. Nat. Clin 목사. Oncol. 16, 151-167 (2019).
Dustin, ML & Long, EO 세포독성 면역학적 시냅스: NK 및 CTL 시냅스. Immunol. 신부님. 235, 24-34 (2010).
González-Granado, JM 외. 핵 봉투 라민-A는 액틴 역학과 면역학적 시냅스 구조 및 T 세포 활성화를 결합합니다. Sci. 신호. 7, ra37(2014).
González, C. 외. Nanobody-CD16 캐치 본드는 NK 세포의 기계적 민감성을 나타냅니다. 생물 물리학. 제이 116, 1516-1526 (2019).
팬(Fan), J. 외. NKG2D는 선택적으로 기계적으로 조절되는 리간드 형태 변화를 통해 다양한 리간드를 식별합니다. EMBO J. 41, e107739 (2022).
Tsopoulidis, N.et al. T 세포 수용체에 의해 유발되는 핵 액틴 네트워크 형성으로 CD4 구동+ T 세포 이펙터 기능. 과학. 면역. 4, eaav1987(2019).
Tamzalit, F. et al. 계면 액틴 돌출부는 세포독성 T 세포에 의한 살해를 기계적으로 향상시킵니다. 과학. 면역. 4, eaav5445(2019).
산체스, EEet al. 세포사멸 수축은 세포독성 T 세포에 의한 표적 세포 방출을 유도합니다. Nat. 면역. https://doi.org/10.1038/s41590-023-01572-4 (2023).
Händel, C. et al. 인간의 유방암과 자궁경부암 세포의 세포막이 부드러워집니다. 뉴저지 물리학 17, 083008 (2015).
Huang, B., Song, B. & Xu, C. 암에서의 콜레스테롤 대사: 메커니즘 및 치료 기회. Nat. 메타브. 2, 132-141 (2020).
한나, RN 외. 순찰 단핵구는 종양이 폐로 전이되는 것을 조절합니다. 과학 350, 985-990 (2015).
Vyas, M.et al. 자연살해세포는 순환하는 암세포를 제거해 암 전이를 억제한다. 앞. 면역. 13, 1098445 (2023).
Hu, B., Xin, Y., Hu, G., Li, K. & Tan, Y. 유체 전단 응력은 NKG2D 매개 기계 감지를 통해 순환 종양 세포에 대한 자연 살해 세포의 세포 독성을 향상시킵니다. 에이피엘바이오엔. 7, 036108 (2023).
Boussommier-Calleja, A. et al. 3D 혈관화 미세유체 모델에서 단핵구가 종양 세포 혈관 외 유출에 미치는 영향. 생체 적합 물질 198, 180-193 (2019).
Soderquest, K. et al. 단핵구는 자연살해세포의 분화를 효과기 표현형으로 조절합니다. 피 117, 4511-4518 (2011).
Kumar, BV, Connors, TJ & Farber, DL 인간 T 세포 발달, 국소화 및 평생 기능. 면제 48, 202-213 (2018).
Surcel, A.et al. 세포 역학 결함을 교정하기 위한 미오신 II 파라로그의 약리학적 활성화. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 112, 1428-1433 (2015).
Mittelheisser, V. et al. 향상된 종양 표적화를 위한 항체-나노입자 접합체의 최적 물리화학적 특성. Adv. 교인. 34, 2110305 (2022).
Guo, P. et al. 나노입자 탄력성은 종양 흡수를 지시합니다. Nat. 코뮌. 9, 130 (2018).
Liang, Q. et al. 종양 세포 유래 미세입자의 부드러움은 약물 전달 효율을 조절합니다. Nat. 생체. 영어 3, 729-740 (2019).
Chen, X. et al. 낮은 세포 강성을 목표로 하여 연암 줄기세포의 나노입자 매개 특정 제거. 액타 바이오마터. 135, 493-505 (2021).
페레즈, JE 외. 자성 나노입자 노출로 인해 일시적인 세포 경화가 발생합니다. J. 나노바이오기술. 19, 117 (2021).
Liu, YXet al. 단일 세포 역학은 폐포 대식세포와 은 나노입자 사이의 생체 내 상호작용을 조사하는 효과적인 수단을 제공합니다. J. Phys. 화학 비 119, 15118-15129 (2015).
Binnewies, M.et al. 효과적인 치료를 위한 종양면역미세환경(TIME)을 이해합니다. Nat. Med. 24, 541-550 (2018).
Hartmann, N.et al. 인간 췌장암에서 기질 내 T 세포 포획에 대한 접촉 안내의 일반적인 역할. 클린. 암 입술. 20, 3422-3433 (2014).
Kuczek, DEet al. 콜라겐 밀도는 종양에 침투하는 T 세포의 활동을 조절합니다. J. 면역. 암 7, 68 (2019).
Sun, X. et al. 종양 DDR1은 콜라겐 섬유 정렬을 촉진하여 면역 배제를 유발합니다. 자연 599, 673-678 (2021).
디 마르티노, JS 외. 종양 유래 III형 콜라겐이 풍부한 ECM 틈새는 종양 세포 휴면을 조절합니다. Nat. 암 3, 90-107 (2021).
Lampi, MC & Reinhart-King, CA 질병을 약화시키기 위한 세포외 기질 강성을 표적으로 삼음: 분자 메커니즘에서 임상 시험까지. 공상 과학 번역 메드 10, eaao0475(2018).
Diop-Frimpong, B., Chauhan, VP, Krane, S., Boucher, Y. & Jain, RK Losartan은 콜라겐 I 합성을 억제하고 종양에서 나노치료제의 분포와 효능을 향상시킵니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 108, 2909-2914 (2011).
Liu, J. et al. TGF-β 차단은 종양 기질을 정상화함으로써 유방암종에서 치료제의 분포와 효능을 향상시킵니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 109, 16618-16623 (2012).
Van Cutsem, E. 외. 히알루로난 수치가 높은 전이성 췌장 선암종 환자를 대상으로 nab-파클리탁셀과 젬시타빈을 병용한 페그보히알루로니다제 알파의 무작위 제3상 시험. J. 클린 온콜. 38, 3185-3194 (2020).
Provenzano, PP 외. 간질의 효소 표적화는 췌장 관 선암종 치료에 대한 물리적 장벽을 제거합니다. 암 세포 21, 418-429 (2012).
Zhong, Y. et al. 세포외 기질의 기계적 리모델링과 향상된 종양 화학요법을 위한 종양 미세환경 활성화 나노효소. Adv. 기능 교인. 31, 2007544 (2021).
Caruana, I.et al. 헤파라나 아제는 CAR- 재 지정된 T 림프구의 종양 침윤 및 항 종양 활성을 촉진합니다. Nat. Med. 21, 524-529 (2015).
Prescher, JA, Dube, DH & Bertozzi, CR 살아있는 동물의 세포 표면에 대한 화학적 리모델링. 자연 430, 873-877 (2004).
Meng, D. et al. 생체 직교 표적화 생세포 나노캐리어 증강 고형 종양 면역요법으로서 현장 활성화 NK 세포. Adv. 기능 교인. 32, 2202603 (2022).
Zhao, Y.et al. 강화된 고형 종양 면역요법을 위해 CAR-T 세포에 히알루로니다제 및 체크포인트 차단 항체를 갖춘 생체직교적 장비입니다. ACS 센트 공상 과학 8, 603-614 (2022).
Saatci, O.et al. LOX(Lysyl Oxidase)를 표적으로 삼중 음성 유방암의 화학요법 저항성을 극복합니다. Nat. 코뮌. 11, 2416 (2020).
Nicolas-Boluda, A. 외. 콜라겐 가교 억제를 통한 종양 경화 복귀는 T 세포 이동 및 항PD-1 치료를 향상시킵니다. eLife 10, e58688 (2021).
De Vita, A.et al. 삼중 음성 유방암 치료를 위한 리실 산화효소 조작 지질 나노소포. Sci. 대표. 11, 5107 (2021).
김, HYet al. 펩타이드 기능화 금 나노프로브를 사용하여 종양 세포외 기질에서 라이실 산화효소 활성을 검출합니다. 암 13, 4523 (2021).
Kanapathipillai, M. et al. 세포외 기질을 변형시키기 위해 라이실 산화효소 표적화 나노입자를 사용하여 유방 종양 성장을 억제합니다. 나노 렛트. 12, 3213-3217 (2012).
Vennin, C.et al. ROCK 억제를 통한 일시적인 조직 프라이밍은 췌장암 진행, 화학 요법에 대한 민감성 및 전이를 분리합니다. 공상 과학 번역 메드 9, eaai8504(2017). 종양 환경의 기계적 특징을 변경하는 것은 치료법을 개선할 수 있는 큰 잠재력을 가지고 있다는 강력한 시연입니다.
머피, KJ 외. Intravital 이미징 기술은 Merlin 상태에 따라 췌장암 정밀 의학에서 FAK 매개 프라이밍을 안내합니다. 공상 과학 Adv. 7, eabh0363(2021).
Tran, E.et al. 섬유아세포 활성화 단백질의 면역 표적화는 다능성 골수 간질 세포 및 악액질의 인식을 촉발합니다. J. Exp. Med. 210, 1125-1135 (2013).
Wang, L.-CSet al. 키메라 항원 수용체 T 세포를 사용하여 종양 간질에서 섬유아세포 활성화 단백질을 표적으로 삼으면 심각한 독성 없이 종양 성장을 억제하고 숙주 면역을 강화할 수 있습니다. 암 면역. 입술 2, 154-166 (2014).
Rurik, JGet al. 심장 손상을 치료하기 위해 생체 내에서 생산된 CAR T 세포. 과학 375, 91-96 (2022).
Correia, ALet al. 간 성상 세포는 NK 세포가 유지하는 유방암 휴면을 억제합니다. 자연 594, 566-571 (2021).
로버츠, EW 외. 골격근과 골수에서 섬유아세포 활성화 단백질-α를 발현하는 간질 세포가 고갈되면 악액질과 빈혈이 발생합니다. J. Exp. Med. 210, 1137-1151 (2013).
Fujimori, K., Covell, DG, Fletcher, JE & Weinstein, JN 종양 내 면역글로불린 G, F(ab')2 및 Fab의 전체 및 현미경 분포에 대한 모델링 분석. Cancer Res. 49, 5656-5663 (1989).
Tabdanov, ED 외. 구조적, 기계적으로 복잡한 종양 미세 환경을 통해 3D 이동을 향상시키기 위해 T 세포를 조작합니다. Nat. 코뮌. 12, 2815 (2021).
휘틀록, B. PTEN 고갈에 의한 세포독성 T 세포 사멸 강화 (웨일 코넬 의학, 2018).
Li, R., Ma, C., Cai, H. & Chen, W. CAR T 세포 기계면역학 개요. Adv. 공상 과학 7, 2002628 (2020).
Chockley, P. J., Ibanez-Vega, J., Krenciute, G., Talbot, L. J. & Gottschalk, S. Synapse 조정 CAR은 면역 세포 항종양 활동을 향상시킵니다. Nat. 바이오 테크 놀. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01650-2 (2023). 이번 연구는 CAR-NK 세포의 면역학적 시냅스 구조를 개선하면 우수한 치료 효능을 얻을 수 있음을 보여줍니다.
Roybal, K.T.et al. 조합 항원 감지 회로를 갖춘 T 세포에 의한 정밀한 종양 인식. 세포 164, 770-779 (2016).
고든, WR 외. 기계적 합금: 노치의 단백질 분해 활성화에 힘이 필요하다는 증거입니다. Dev. 세포 33, 729-736 (2015).
Sloas, DC, Tran, JC, Marzilli, AM & Ngo, JT 합성 기계 변환 및 세포 간 힘 감지를 위한 장력 조정 수용체. Nat. 바이오 테크 놀. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01638-y (2023).
Mittelheisser, V. et al. 나노의학을 통한 면역치료 활용. Adv. 저것. 3, 2000134 (2020).
Perica, K.et al. 나노입자에 의한 자기장 유도 T 세포 수용체 클러스터링은 T 세포 활성화를 강화하고 항종양 활성을 자극합니다. ACS 나노 8, 2252-2260 (2014).
Majedi, FSet al. 진동력과 조작된 항원 제시 세포에 의한 T 세포 활성화의 증대. 나노 렛트. 19, 6945-6954 (2019).
Vis, B. et al. 초소형 실리카 나노입자는 T 세포 수용체 복합체를 직접 결찰합니다. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 117, 285-291 (2020).
김 K.-S. 외. 효과적인 암 면역치료를 위한 자연살해세포의 양이온성 나노입자 매개 활성화. ACS Appl. 교인. 인터페이스 12, 56731-56740 (2020).
Sim, T. et al. 고형 종양 치료를 위한 자기 나노복합체로 표지된 자연 살해 세포의 자기 활성화 및 자기 공명 영상. ACS 나노 15, 12780-12793 (2021).
Liu, Z.et al. 살아있는 세포에서 기계적 변환을 제어하기 위한 나노규모의 광기계적 액추에이터. Nat. 행동 양식 13, 143-146 (2016).
Farhadi, A., Ho, GH, Sawyer, DP, Bourdeau, RW & Shapiro, MG 포유류 세포의 유전자 발현에 대한 초음파 영상. 과학 365, 1469-1475 (2019).
Wang, X., Chen, X. & Yang, Y. 광 전환 가능한 이식 유전자 시스템에 의한 유전자 발현의 시공간 제어. Nat. 행동 양식 9, 266-269 (2012).
Pan, Y. et al. 암 면역요법의 원격 및 비침습적 제어를 위한 기계유전학. Proc. Natl Acad. Sci. 미국 115, 992-997 (2018).
González-Bermúdez, B., 기니, GV & Plaza, GR 마이크로피펫 흡인의 발전: 세포 생체역학, 모델 및 확장 연구에 적용. 생물 물리학. 제이 116, 587-594 (2019).
Otto, O.et al. 실시간 변형성 세포 계측법: 즉각적인 세포 기계적 표현형 분석. Nat. 행동 양식 12, 199-202 (2015). 세포의 기계적 특성을 측정하기 위한 최첨단 고처리량 RT-DC 기술을 도입합니다.
Gerum, R.et al. 전단 유동 변형 세포측정법으로 측정된 부유 세포의 점탄성 특성. eLife 11, e78823 (2022).
Sánchez-Iranzo, H., Bevilacqua, C., Diz-Muñoz, A. & Prevedel, R. 생체 내 제브라피시 눈의 3D Brillouin 현미경 데이터세트. 데이터 요약. 30, 105427 (2020).
Conrad, C., Gray, KM, Stroka, KM, Rizvi, I. & Scarcelli, G. Brillouin 공초점 현미경을 사용한 3D 난소암 결절의 기계적 특성 분석. 셀. 몰. 바이오엔지. 12, 215-226 (2019).
우, P.-H. 외. 살아있는 피험자의 암세포의 입자 추적 미세유변학. 교인. 오늘 39, 98-109 (2020).
Falchuk, K. & Berliner, R. 쥐 신장의 관주위 모세혈관과 세뇨관의 정수압. 오전. J. Physiol. 220, 1422-1426 (1971).
Petrie, RJ & Koo, H. 세포내 압력의 직접 측정. 현재 프로토콜. 셀바이올. 63(2014).
Harlepp, S., Thalmann, F., Follain, G. & Goetz, JG 혈역학적 힘은 광학 핀셋을 사용하여 생체 내에서 정확하게 측정할 수 있습니다. Mol. Biol. 세포 28, 3252-3260 (2017).
Mongera, A.et al. 유체에서 고체로의 재밍 전환은 척추동물 신체 축 신장의 기초가 됩니다. 자연 561, 401-405 (2018).
Mongera, A.et al. zebrafish presomitic mesoderm 분화 동안 생체 내 세포에 의해 조사된 세포 미세 환경의 역학. Nat. 교인. 22, 135-143 (2023).
Vorselen, D.et al. 미세입자 견인력 현미경 검사법은 면역 세포-표적 상호 작용에서 세포하 힘 발휘 패턴을 보여줍니다. Nat. 코뮌. 11, 20 (2020).
Meng, F., Suchyna, TM & Sachs, F. 현장의 특정 단백질에 대한 형광 에너지 전달 기반 기계적 스트레스 센서: 기계적 스트레스 센서. 페브스 J. 275, 3072-3087 (2008).
Grashoff, C.et al. 빈쿨린의 기계적 장력을 측정하면 초점 접착 역학의 조절이 드러납니다. 자연 466, 263-266 (2010).
Conway, DEet al. 내피 세포의 유체 전단 응력은 VE-cadherin과 PECAM-1의 기계적 장력을 조절합니다. Curr. Biol. 23, 1024-1030 (2013).
Pan, X. et al. 점도에 민감한 형광 프로브를 사용한 암세포 이동 평가. 화학 코뮌. 58, 4663-4666 (2022).
Shimolina, LE 외. 분자 로터를 사용하여 생체 내 종양 현미경 점도를 이미징합니다. Sci. 대표. 7, 41097 (2017).
Sack, I. 기본적인 연조직 역학부터 진단 영상까지 자기 공명 탄성촬영술. Nat. Phys. 5, 25-42 (2022).
Soteriou, D.et al. 기계적으로 분리된 조직 생검의 신속한 단일 세포 물리적 표현형 분석. Nat. 생체. 영어 https://doi.org/10.1038/s41551-023-01015-3 (2023).
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- PlatoHealth. 생명 공학 및 임상 시험 인텔리전스. 여기에서 액세스하십시오.
- 출처: https://www.nature.com/articles/s41565-023-01535-8