Notomi, T. et al. Schleifenvermittelte isotherme Amplifikation von DNA. Nukleinsäuren Res. 28, e63 - e63 (2000).
Piepenburg, O., Williams, CH, Stemple, DL & Armes, NA DNA-Nachweis mithilfe von Rekombinationsproteinen. PLoS Biol. 4, e204 (2006).
Fozouni, P. et al. Amplifikationsfreier Nachweis von SARS-CoV-2 mit CRISPR-Cas13a und Mobiltelefonmikroskopie. Zelle 184, 323-333 (2021).
Chen, JS et al. Die CRISPR-Cas12a-Zielbindung löst wahllose einzelsträngige DNase-Aktivität aus. Wissenschaft 360, 436-439 (2018).
Gootenberg, JS et al. Nukleinsäurenachweis mit CRISPR–Cas13a/C2c2. Wissenschaft 356, 438-442 (2017).
Holland, PM, Abramson, RD, Watson, R. & Gelfand, DH Nachweis eines spezifischen Polymerase-Kettenreaktionsprodukts durch Nutzung der 5′–3′-Exonukleaseaktivität von Thermus Aquaticus DNA-Polymerase. Proc. Natl Acad. Sci. Vereinigte Staaten von Amerika 88, 7276-7280 (1991).
Broughton, JP et al. CRISPR-Cas12-basierter Nachweis von SARS-CoV-2. Nat. Biotechn. 38, 870-874 (2020).
Marras, SA, Kramer, FR & Tyagi, S. Effizienz des Fluoreszenzresonanzenergietransfers und der kontaktvermittelten Löschung in Oligonukleotidsonden. Nukleinsäuren Res. 30, e122 - e122 (2002).
Yeh, H.-C., Sharma, J., Han, JJ, Martinez, JS & Werner, JHA DNA-Silber-Nanocluster-Sonde, die bei Hybridisierung fluoresziert. Nano Lett. 10, 3106-3110 (2010).
O'Neill, PR, Gwinn, EG & Fygenson, DK UV-Anregung der DNA stabilisierte die Ag-Cluster-Fluoreszenz über die DNA-Basen. J. Phys. Chem. C. 115, 24061-24066 (2011).
Petty, JT, Zheng, J., Hud, NV & Dickson, RM DNA-gestützte Bildung von Ag-Nanoclustern. Marmelade. Chem. Soc. 126, 5207-5212 (2004).
Ja, H.-C. et al. Eine fluoreszenzbeleuchtete Ag-Nanocluster-Sonde, die Einzelnukleotidvarianten anhand der Emissionsfarbe unterscheidet. Marmelade. Chem. Soc. 134, 11550-11558 (2012).
Blevins, MS et al. Fußabdrücke nanoskaliger DNA-Silbercluster-Chromophore mittels Photodetachment-Massenspektrometrie mit aktivierten Elektronen. ACS Nano 13, 14070-14079 (2019).
Copp, SM et al. Magische Zahlen in DNA-stabilisierten fluoreszierenden Silberclustern führen zu magischen Farben. J. Phys. Chem. Lette. 5, 959-963 (2014).
He, C., Goodwin, PM, Yunus, AI, Dickson, RM & Petty, JT Ein gespaltenes DNA-Gerüst für einen grün fluoreszierenden Silbercluster. J. Phys. Chem. C. 123, 17588-17597 (2019).
Schultz, D. et al. Hinweise auf stabförmige DNA-stabilisierte Silber-Nanocluster-Emitter. Erw. Mater. 25, 2797-2803 (2013).
Petty, JT et al. Optische Sensorik durch Transformation chromophorer Silbercluster in DNA-Nanoreaktoren. Anal. Chem.-Nr. 84, 356-364 (2012).
Chen, J. et al. CRISPR/Cas präzise regulierter DNA-basierter Silber-Nanocluster-Fluoreszenzsensor zur Erkennung von Fleischverfälschungen. J. Agric. Lebensmittelchem. 70, 14296-14303 (2022).
Lee, CY, Park, KS, Jung, YK & Park, HG Ein markierungsfreier Fluoreszenztest für die Desoxyribonuklease-I-Aktivität basierend auf einem DNA-gestützten Silber-Nanocluster/Graphenoxid-Nanokomposit. Biosens. Bioelektron. 93, 293-297 (2017).
Kuo, YA et al. Massiv parallele Auswahl von Nanocluster-Beacons. Erw. Mater. 34, e2204957 (2022).
Chen, Y.-A. et al. Nanocluster-Beacons ermöglichen die Erkennung eines einzelnen N6-Methyladenin. Marmelade. Chem. Soc. 137, 10476-10479 (2015).
Obliosca, JM et al. Eine ergänzende Palette von Nanocluster-Beacons. ACS Nano 8, 10150-10160 (2014).
Cerretani, C., Kanazawa, H., Vosch, T. & Kondo, J. Kristallstruktur eines NIR-emittierenden DNA-stabilisierten Ag16 Nanocluster. Angew. Chem.-Nr. Int. Ed. 58, 17153-17157 (2019).
Petty, JT et al. Ein DNA-verkapselter Silbercluster und die Rolle seiner Nukleobasenliganden. J. Phys. Chem. C. 122, 28382-28392 (2018).
Koszinowski, K. & Ballweg, K. Ein hoch aufgeladener Ag64+ Kern in einem DNA-verkapselten Silbernanocluster. Chem. EUR. J. J. 16, 3285-3290 (2010).
Gonzalez-Rosell, A. et al. Chloridliganden auf DNA-stabilisierten Silbernanoclustern. Marmelade. Chem. Soc. 145, 10721-10729 (2023).
Huard, DJ et al. Atomstruktur eines fluoreszierenden Ag8 Cluster basierend auf einem mehrsträngigen DNA-Gerüst. Marmelade. Chem. Soc. 141, 11465-11470 (2018).
Markham, NR & Zuker, M. UNAFold: Software für die Faltung und Hybridisierung von Nukleinsäuren. Methoden Mol. Biol. 453, 3-31 (2008).
Cong, X. et al. Bestimmung der Thermodynamik der Membranprotein-Lipid-Bindung mittels nativer Massenspektrometrie. Marmelade. Chem. Soc. 138, 4346-4349 (2016).
McCabe, JW et al. Elektrospray-Ionisation bei variabler Temperatur für temperaturabhängige Faltungs-/Rückfaltungsreaktionen von Proteinen und Ligandenbindung. Anal. Chem.-Nr. 93, 6924-6931 (2021).
Ramachandran, A. & Santiago, JG CRISPR-Enzymkinetik für die Molekulardiagnostik. Anal. Chem.-Nr. 93, 7456-7464 (2021).
Nguyen, LT, Smith, BM & Jain, PK Verbesserung von trans-Die Spaltungsaktivität von Cas12a mit manipulierter crRNA ermöglicht den verstärkten Nachweis von Nukleinsäuren. Nat. Commun 11, 4906 (2020).
Nalefski, EA et al. Kinetische Analyse von Cas12a- und Cas13a-RNA-gesteuerten Nukleasen zur Entwicklung einer verbesserten CRISPR-basierten Diagnostik. iScience 24, 102996 (2021).
Yeh, H.-C., Sharma, J., Han, JJ, Martinez, JS & Werner, JH Ein Leuchtfeuer. IEEE-Nanotechnologie. Mag. 5, 28-33 (2011).
Juul, S. et al. Nanocluster-Beacons als Reportersonden im Rolling Circle verbesserten die Erkennung der Enzymaktivität. Nanoskala 7, 8332-8337 (2015).
Ge, L., Sun, X., Hong, Q. & Li, F. Ratiometrischer Nanocluster-Beacon: eine markierungsfreie und empfindliche Plattform zur Erkennung fluoreszierender DNA. ACS Appl. Mater. Schnittstellen 9, 13102-13110 (2017).
Suo, T. et al. Ein vielseitiges, einschaltbares fluorometrisches Biosensorprofil, das auf dem Aufbau eines Nanocluster-Beacon-Sandwichs mit Split-Aptameren basiert. Sens. Aktoren B. 324, 128586 (2020).
Gwinn, E., Schultz, D., Copp, SM & Swasey, S. DNA-geschützte Silbercluster für die Nanophotonik. Nanomaterialien 5, 180-207 (2015).
Zou, X., Kang, X. & Zhu, M. Jüngste Entwicklungen bei der Untersuchung der treibenden Kräfte für die Transformation von Münzmetall-Nanoclustern. Chem.-Nr. Soz. Rev. 52, 5892-5967 (2023).
Leytus, SP, Melhado, LL & Mangel, WF Rhodaminbasierte Verbindungen als fluorogene Substrate für Serinproteinasen. Biochem. J. J. 209, 299-307 (1983).
Broto, M. et al. Nanozyme-katalysierter CRISPR-Assay zum voramplifikationsfreien Nachweis nichtkodierender RNAs. Nat. Nanotechnologie. 17, 1120-1126 (2022).
Hu, Q. et al. DNAzyme-basiertes treues Sondieren und Pulldown zur Identifizierung von Kandidaten-Biomarkern mit geringer Häufigkeit. Nat. Chem.-Nr. 16, 122-131 (2023).
Fort, KL et al. Implementierung der Ultraviolett-Photodissoziation auf einem Tisch-Q-exakten Massenspektrometer und ihre Anwendung auf die Phosphoproteomik. Anal. Chem.-Nr. 88, 2303-2310 (2016).
Sanders, JD et al. Verbesserte Ionenmobilitätstrennung und Charakterisierung isomerer Phosphatidylcholine mittels Absorptionsmodus-Fourier-Transformations-Multiplexing und Ultraviolett-Photodissoziations-Massenspektrometrie. Anal. Chem.-Nr. 94, 4252-4259 (2022).
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- Quelle: https://www.nature.com/articles/s41565-024-01612-6
