Klotter, V. et coll. L'évaluation de l'augmentation pathologique de la rigidité hépatique permet un diagnostic plus précoce de la CFLD : résultats d'une étude de cohorte longitudinale prospective. PLoS ONE 12, e0178784 (2017).
Medrano, LM et coll. Une raideur hépatique élevée est liée à une augmentation des biomarqueurs de l’inflammation et de l’activation immunitaire chez les patients co-infectés par le VIH et le virus de l’hépatite C. SIDA 32, 1095 – 1105 (2018).
Tomlin, H. & Piccinini, AM Une interaction complexe entre la matrice extracellulaire et la réponse immunitaire innée aux agents pathogènes microbiens. Immunologie 155, 186 – 201 (2018).
Martinez-Vidal, L. et al. Contributeurs causals à la rigidité des tissus et pertinence clinique en urologie. Commun.Biol. 4, 1011 (2021).
Mohammadi, H. & Sahai, E. Mécanismes et impact de la mécanique tumorale altérée. Nat. Biol cellulaire. 20, 766 – 774 (2018).
Du, H. et coll. Ajustement de l’immunité grâce à la mécanotransduction tissulaire. Nat. Rév. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41577-022-00761-w (2022).
Zhu, C., Chen, W., Lou, J., Rittase, W. et Li, K. Mécanodétection via des immunorécepteurs. Nat. Immunol. 20, 1269 – 1278 (2019).
Judokusumo, E., Tabdanov, E., Kumari, S., Dustin, ML & Kam, LC Mécanodétection dans l'activation des lymphocytes T. Biophys. J. 102, L5-L7 (2012).
O'Connor, RS et coll. La rigidité du substrat régule l’activation et la prolifération des lymphocytes T humains. J. Immunol. 189, 1330 – 1339 (2012).
Saitakis, M. et coll. Différentes réponses lymphocytaires T induites par le TCR sont potentialisées par une raideur avec une sensibilité variable. eLife 6, e23190 (2017).
Blumenthal, D., Chandra, V., Avery, L. et Burkhardt, JK L'amorçage des cellules T de souris est amélioré par le raidissement dépendant de la maturation du cortex des cellules dendritiques. eLife 9, e55995 (2020). Travaux importants qui mettent en lumière l’aspect mécanique de l’activation des cellules T médiée par les cellules dendritiques.
Basu, R. et coll. Les cellules T cytotoxiques utilisent la force mécanique pour potentialiser la destruction des cellules cibles. Cellule 165, 100 – 110 (2016). Étude fondamentale qui met en évidence le rôle critique des forces mécaniques dans l’activité cytotoxique des cellules T.
Liu, Y. et coll. La douceur cellulaire empêche la destruction cytolytique des cellules T qui repeuplent la tumeur. Cancer Res. 81, 476 – 488 (2021).
Tello-Lafoz, M. et al. Les lymphocytes cytotoxiques ciblent les vulnérabilités biophysiques caractéristiques du cancer. Immunité 54, 1037-1054.e7 (2021).
Lei, K. et coll. Le renforcement des cellules cancéreuses via une déplétion en cholestérol améliore l’immunothérapie adoptive à cellules T. Nat. Biomed. Ing. 5, 1411 – 1425 (2021). Des études influentes (réf. 14,15, XNUMX) montrent que le raidissement des cellules tumorales par une manipulation génétique ciblant le MRTF ou par une diminution du cholestérol de la membrane cellulaire entraîne une plus grande vulnérabilité à la destruction médiée par les lymphocytes T.
Provenzano, PP et coll. La réorganisation du collagène à l'interface tumeur-stromal facilite l'invasion locale. BMC Med. 4, 38 (2006).
Levental, KR et coll. La réticulation matricielle force la progression tumorale en améliorant la signalisation des intégrines. Cellule 139, 891 – 906 (2009).
Goetz, JG et coll. Le remodelage biomécanique du microenvironnement par la cavéoline stromale-1 favorise l'invasion tumorale et les métastases. Cellule 146, 148 – 163 (2011).
Massagué, J. TGFβ dans le cancer. Cellule 134, 215 – 230 (2008).
Insua‐Rodríguez, J. et al. La signalisation du stress dans les cellules cancéreuses du sein induit des composants matriciels qui favorisent les métastases chimiorésistantes. EMBO Mol. Méd. 10, e9003 (2018).
Lui, X. et al. Les propriétés physiques de la matrice extracellulaire régissent la diffusion des nanoparticules dans le microenvironnement tumoral. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 120, e2209260120 (2023).
Saumon, H. et al. L'architecture matricielle définit la localisation préférentielle et la migration des cellules T dans le stroma des tumeurs pulmonaires humaines. J. Clin. Investir. 122, 899 – 910 (2012).
Salnikov, AV et coll. L'abaissement de la pression du liquide interstitiel tumoral augmente spécifiquement l'efficacité de la chimiothérapie. FASEB J. 17, 1756 – 1758 (2003).
Guck, J. et al. Déformabilité optique comme marqueur cellulaire inhérent pour tester la transformation maligne et la compétence métastatique. Biophys. J. 88, 3689 – 3698 (2005).
Plodinec, M. et al. La signature nanomécanique du cancer du sein. Nat. Nanotechnologie. 7, 757 – 765 (2012).
Chen, Y., McAndrews, KM et Kalluri, R. Pertinence clinique et thérapeutique des fibroblastes associés au cancer. Nat. Rév. Clin. Oncol. 18, 792 – 804 (2021).
Gensbittel, V. et al. Adaptabilité mécanique des cellules tumorales en métastases. Dev. Cellule 56, 164 – 179 (2021). Cette revue présente l'hypothèse selon laquelle les cellules tumorales ajustent leurs propriétés mécaniques tout au long de leur parcours métastatique.
Lv, J. et coll. La douceur cellulaire régule la tumorigénicité et la souche des cellules cancéreuses. EMBO J. 40, e106123 (2021).
Matthews, HK et coll. La signalisation oncogène modifie la forme et la mécanique des cellules pour faciliter la division cellulaire sous confinement. Dev. Cellule 52, 563-573.e3 (2020).
Young, KM et coll. Corréler les données mécaniques et d'expression génique au niveau d'une seule cellule pour étudier les phénotypes métastatiques. iScience 26, 106393 (2023).
Rianna, C., Radmacher, M. et Kumar, S. Preuve directe que les cellules tumorales se ramollissent lors de la navigation dans des espaces confinés. Mol. Biol. Cellule 31, 1726 – 1734 (2020).
Regmi, S., Fu, A. & Luo, KQ Des contraintes de cisaillement élevées dans des conditions d'exercice détruisent les cellules tumorales circulantes dans un système microfluidique. Sci. représentant 7, 39975 (2017).
Moose, DL et coll. Les cellules cancéreuses résistent à la destruction mécanique dans la circulation via une mécano-adaptation dépendante du rhoa/actomyosine. Cell Rep. 30, 3864-3874.e6 (2020).
Chen, J. et al. L’extravasation efficace des cellules repeuplant la tumeur dépend de la déformabilité cellulaire. Sci. représentant 6, 19304 (2016).
Saito, D. et coll. La rigidité des cellules germinales primordiales est requise pour leur extravasation dans les embryons aviaires. iScience 25, 105629 (2022).
Euh, EE et al. La propagation de type péricyte par les cellules cancéreuses disséminées active YAP et MRTF pour la colonisation métastatique. Nat. Biol cellulaire. 20, 966 – 978 (2018).
Wen, Z., Zhang, Y., Lin, Z., Shi, K. et Jiu, Y. Cytosquelette – une clé cruciale dans la cellule hôte pour l'infection par le coronavirus. J. Mol. Cellule. Biol. 12, 968 – 979 (2021).
Paluck, A. et coll. Rôle de la polymérisation de l'actine pilotée par le complexe ARP2/3 dans l'infection par le RSV. Agents pathogènes 11, 26 (2021).
Kubánková, M. et al. Le phénotype physique des cellules sanguines est modifié dans le cas du COVID-19. Biophys. J. 120, 2838 – 2847 (2021).
Yang, J., Barrila, J., Roland, KL, Ott, CM et Nickerson, CA Le cisaillement des fluides physiologiques modifie le potentiel de virulence des virus non typhoïdiens invasifs multirésistants Salmonelle typhimurium D23580. npj Microgravité 2, 16021 (2016).
Padron, GC et coll. Le taux de cisaillement sensibilise les agents pathogènes bactériens à H2O2 stress. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 120, e2216774120 (2023).
Mikaty, G. et coll. L'agent pathogène bactérien extracellulaire induit une réorganisation de la surface des cellules hôtes pour résister au stress de cisaillement. Pathog PLoS. 5, e1000314 (2009).
Kuo, C. et coll. L'infection à rhinovirus induit un dépôt de protéines de la matrice extracellulaire dans les cellules musculaires lisses des voies respiratoires asthmatiques et non asthmatiques. Un m. J. Physiol. Cellule pulmonaire. Mol. Physiol. 300, L951-L957 (2011).
Nagy, N. et coll. Hyaluronane dans la dérégulation immunitaire et les maladies auto-immunes. Matrice Biol. 78-79, 292 – 313 (2019).
Fingleton, B. Métalloprotéinases matricielles en tant que régulateurs des processus inflammatoires. Biochimie. Biophysique. Acta Mol. Cellule Rés. 1864, 2036 – 2042 (2017).
Krishnamurty, AT & Turley, SJ Cellules stromales des ganglions lymphatiques : cartographes du système immunitaire. Nat. Immunol. 21, 369 – 380 (2020).
Wynn, TA Intégration des mécanismes de la fibrose pulmonaire. J. Exp. Med. 208, 1339 – 1350 (2011).
Tschöpe, C. et al. Myocardite et cardiomyopathie inflammatoire : données actuelles et orientations futures. Nat. Rév. Cardiol. 18, 169 – 193 (2021).
Fabre, T. et coll. Identification d'un sous-ensemble de macrophages largement fibrogènes induit par une inflammation de type 3. Sci. Immunol. 8, eadd8945 (2023).
de Boer, RA et coll. Vers une meilleure définition, quantification et traitement de la fibrose dans l’insuffisance cardiaque. Une feuille de route scientifique du Comité de recherche translationnelle de la Heart Failure Association (HFA) de la Société européenne de cardiologie. EUR. J. Échec cardiaque. 21, 272 – 285 (2019).
Liu, F. et al. Amplification par rétroaction de la fibrose par raidissement de la matrice et suppression de la COX-2. J.Cell Biol. 190, 693 – 706 (2010).
Georges, PC et coll. Une rigidité accrue du foie du rat précède le dépôt de la matrice : implications pour la fibrose. Suis. J. Physiol. Intérêt gastro-intestinal. Physiol du foie. 293, G1147-G1154 (2007).
Stock, KF et al. Quantification de l'élasticité des tissus basée sur l'ARFI par rapport à l'histologie pour le diagnostic de la fibrose de transplantation rénale. Clin. Hémorhéol. Microcirc. 46, 139 – 148 (2010).
Gadd, VL et coll. L'infiltrat inflammatoire portal et la réaction canalaire dans la stéatose hépatique non alcoolique humaine. Hépatologie 59, 1393 – 1405 (2014).
Mogilenko, DA, Shchukina, I. & Artyomov, MN Vieillissement immunitaire à résolution unicellulaire. Nat. Rév. Immunol. 22, 484 – 498 (2022).
Roman, MJ et coll. Raideur artérielle dans les maladies inflammatoires chroniques. Hypertension 46, 194 – 199 (2005).
Klingberg, F., Hinz, B. & White, ES La matrice myofibroblastique : implications pour la réparation tissulaire et la fibrose : la matrice myofibroblastique. J. Pathol. 229, 298 – 309 (2013).
Liu, F. et al. La mécanosignalisation via YAP et TAZ entraîne l'activation des fibroblastes et la fibrose. Un m. J. Physiol. Cellule pulmonaire. Mol. Physiol. 308, L344-L357 (2015).
Tomasek, JJ, Gabbiani, G., Hinz, B., Chaponnier, C. & Brown, RA Myofibroblastes et mécano-régulation du remodelage du tissu conjonctif. Nat. Rév. Mol. Cell Biol. 3, 349 – 363 (2002).
Munger, JS et coll. Un mécanisme de régulation de l’inflammation pulmonaire et de la fibrose : l’intégrine αvβ6 se lie et active le TGF β1 latent. Cellule 96, 319 – 328 (1999).
Santos, A. & Lagares, D. Rigidité matricielle : le conducteur de la fibrose des organes. Curr. Rhumatol. représentant 20, 2 (2018).
Morvan, MG & Lanier, LL Cellules NK et cancer : on peut apprendre de nouvelles astuces aux cellules innées. Nat. Révérend Cancer 16, 7 – 19 (2016).
Janeway, CA Comment le système immunitaire fonctionne pour protéger l'hôte contre l'infection : un point de vue personnel. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 98, 7461 – 7468 (2001).
Dustin, activation des lymphocytes T ML par le biais de synapses et de kinapses immunologiques. Immunol. Tour. 221, 77 – 89 (2008).
Feng, Y., Zhao, X., White, AK, Garcia, KC & Fordyce, PM Une méthode basée sur les billes pour la cartographie à haut débit de la dépendance à la séquence et à la force de l'activation des lymphocytes T. Nat. Les méthodes 19, 1295 – 1305 (2022).
Mordechay, L. et al. Régulation mécanique de l'activité cytotoxique des cellules tueuses naturelles. ACS Biomater. Sci. Ing. 7, 122 – 132 (2021).
Lei, K., Kurum, A. & Tang, L. Immuno-ingénierie mécanique des cellules T pour des applications thérapeutiques. Acc. Chem. Rés. 53, 2777 – 2790 (2020). Revue complète des progrès récents en immuno-ingénierie mécanique et de leurs applications thérapeutiques potentielles.
Seghir, R. & Arscott, S. Plage de rigidité PDMS étendue pour les systèmes flexibles. Sens. Actionneurs Phys. 230, 33 – 39 (2015).
Guimarães, CF, Gasperini, L., Marques, AP & Reis, RL La rigidité des tissus vivants et ses implications pour l'ingénierie tissulaire. Nat. Révérend Mater. 5, 351 – 370 (2020).
Denisin, AK & Pruitt, BL Réglage de la gamme de rigidité des gels de polyacrylamide pour les applications mécanobiologiques. Application ACS. Maître. Interfaces 8, 21893 – 21902 (2016).
Geissmann, F. et coll. Développement de monocytes, de macrophages et de cellules dendritiques. Sciences 327, 656 – 661 (2010).
Follain, G. et coll. Les fluides et leur mécanique dans le transit tumoral : façonner les métastases. Nat. Révérend Cancer 20, 107 – 124 (2020).
Baratchi, S. et al. L’implantation valvulaire aortique par cathéter représente une thérapie anti-inflammatoire via la réduction de l’activation des monocytes induite par la contrainte de cisaillement et médiée par piézo-1. La circulation 142, 1092 – 1105 (2020).
Serafini, N. et al. Le canal TRPM4 contrôle la fonction des monocytes et des macrophages, mais pas celle des neutrophiles, pour la survie en cas de sepsis. J. Immunol. 189, 3689 – 3699 (2012).
Beningo, KA & Wang, Y. La phagocytose médiée par les récepteurs Fc est régulée par les propriétés mécaniques de la cible. J. Cell Sci. 115, 849 – 856 (2002).
Sosale, NG et coll. La rigidité et la forme des cellules annulent « l'auto-signalisation » du CD47 lors de la phagocytose en hyperactivant la myosine-II. sanguins 125, 542 – 552 (2015).
Sridharan, R., Cavanagh, B., Cameron, AR, Kelly, DJ et O'Brien, FJ La rigidité des matériaux influence l'état de polarisation, la fonction et le mode de migration des macrophages. Acta Biomater. 89, 47 – 59 (2019).
Hu, Y. et al. L'imagerie de force moléculaire révèle que le point de contrôle mécanique dépendant de l'intégrine régule la phagocytose médiée par le récepteur Fcy dans les macrophages. Nano Lett. 23, 5562 – 5572 (2023).
Atcha, H. et al. Le canal ionique activé mécaniquement Piezo1 module la polarisation des macrophages et la détection de la rigidité. Nat. Commun. 12, 3256 (2021).
Geng, J. et al. La signalisation TLR4 via Piezo1 engage et améliore la réponse de l'hôte médiée par les macrophages lors d'une infection bactérienne. Nat. Commun. 12, 3519 (2021).
Dupont, S. et al. Rôle de YAP/TAZ dans la mécanotransduction. Nature 474, 179 – 183 (2011).
Rice, AJ et coll. La rigidité de la matrice induit une transition épithéliale-mésenchymateuse et favorise la chimiorésistance des cellules cancéreuses du pancréas. oncogenèse 6, e352 (2017).
Oliver-De La Cruz, J. et al. La mécanique du substrat contrôle l'adipogenèse par la phosphorylation du YAP en dictant la propagation cellulaire. Biomatériaux 205, 64 – 80 (2019).
Meli, VS et al. La mécanotransduction médiée par YAP ajuste la réponse inflammatoire des macrophages. Sci. Avancé. 6, eab8471 (2020).
Steinman, RM Décisions concernant les cellules dendritiques : passées, présentes et futures. Annu. Rév. Immunol. 30, 1 – 22 (2012).
Moreau, HD et coll. La macropinocytose surmonte le biais directionnel des cellules dendritiques dû à la résistance hydraulique et facilite l'exploration spatiale. Dev. Cellule 49, 171-188.e5 (2019).
Laplaud, V. et al. Le pincement du cortex des cellules vivantes révèle des instabilités d'épaisseur causées par les moteurs de la myosine II. Sci. Av. 7, eabe3640 (2021).
Barbier, L. et al. L'activité de la myosine II est nécessaire de manière sélective pour la migration dans des microenvironnements hautement confinés dans les cellules dendritiques matures. De face. Immunol. 10, 747 (2019).
Chabaud, M. et al. La migration cellulaire et la capture d'antigènes sont des processus antagonistes couplés par la myosine II dans les cellules dendritiques. Nat. Commun. 6, 7526 (2015).
Leithner, A. et coll. La dynamique de l’actine des cellules dendritiques contrôle la durée du contact et l’efficacité de l’amorçage au niveau de la synapse immunologique. J.Cell Biol. 220, e202006081 (2021).
Kang, J.-H. et coll. Les forces biomécaniques améliorent la migration dirigée et l'activation des cellules dendritiques dérivées de la moelle osseuse. Sci. représentant 11, 12106 (2021).
van den Dries, K. et coll. La détection de la géométrie par les cellules dendritiques dicte l'organisation spatiale et la dissolution des podosomes induite par la PGE2. Cellule. Mol. Science de la vie. 69, 1889 – 1901 (2012).
Chakraborty, M. et al. La rigidité mécanique contrôle le métabolisme et la fonction des cellules dendritiques. Cell Rep. 34, 108609 (2021).
Mennens, SFB et al. La rigidité du substrat influence le phénotype et la fonction des cellules dendritiques humaines présentant l'antigène. Sci. représentant 7, 17511 (2017).
Figdor, CG, van Kooyk, Y. & Adema, GJ Récepteurs de lectine de type C sur les cellules dendritiques et les cellules de Langerhans. Nat. Rév. Immunol. 2, 77 – 84 (2002).
Bufi, N. et al. Les cellules immunitaires primaires humaines présentent des propriétés mécaniques distinctes qui sont modifiées par l'inflammation. Biophys. J. 108, 2181 – 2190 (2015).
Comrie, WA, Babich, A. & Burkhardt, JK Le flux de F-actine détermine la maturation d'affinité et l'organisation spatiale du LFA-1 au niveau de la synapse immunologique. J.Cell Biol. 208, 475 – 491 (2015).
Wang, Y. et al. La cellule dendritique Piezo1 dirige la différenciation de TH1 et Treg cellules cancéreuses. eLife 11, e79957 (2022).
Valignat, député. et coll. Les lymphocytes peuvent s'auto-orienter passivement avec les uropodes girouettes. Nat. Commun. 5, 5213 (2014).
Roy, NH, MacKay, JL, Robertson, TF, Hammer, DA et Burkhardt, JK Les protéines adaptatrices Crk assurent la médiation de la migration des lymphocytes T dépendant de l'actine et de la mécanodétection induite par l'intégrine LFA-1. Sci. Signal. 11eaat3178 (2018).
Hope, JM et coll. Le stress de cisaillement des fluides améliore l’activation des lymphocytes T via Piezo1. BMC Biol. 20, 61 (2022).
Husson, J., Chemin, K., Bohineust, A., Hivroz, C. et Henry, N. Génération de force lors de l'engagement du récepteur des lymphocytes T. PLoS ONE 6, e19680 (2011). Une utilisation élégante d'une technique de sonde de force biomembranaire pour mesurer les forces exercées par les cellules T lors de leur engagement avec des cellules présentatrices d'antigène.
Liu, B., Chen, W., Evavold, BD et Zhu, C. L'accumulation de liaisons de capture dynamiques entre le TCR et le peptide agoniste – MHC déclenche la signalisation des lymphocytes T. Cellule 157, 357 – 368 (2014).
Thauland, TJ, Hu, KH, Bruce, MA & Butte, MJ L'adaptabilité du cytosquelette régule la signalisation des récepteurs des lymphocytes T. Sci. Signal. 10, eaah3737 (2017).
Gaertner, F. et al. WASp déclenche des patchs d'actine mécanosensibles pour faciliter la migration des cellules immunitaires dans les tissus denses. Dev. Cellule 57, 47-62.e9 (2022).
Majedi, FS et coll. L'activation des lymphocytes T est modulée par le microenvironnement mécanique 3D. Biomatériaux 252, 120058 (2020).
Wang, H. et al. ZAP-70 : une kinase essentielle dans la signalisation des lymphocytes T. Printemps froid Harb. Perspective. Biol. 2, a002279 (2010).
Bashour, KT et al. CD28 et CD3 jouent des rôles complémentaires dans les forces de traction des lymphocytes T. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 111, 2241 – 2246 (2014).
Hu, KH & Butte, MJ L’activation des cellules T nécessite la génération de force. J.Cell Biol. 213, 535 – 542 (2016).
Liu, Y. et coll. Les capteurs de tension de nanoparticules basés sur l'ADN révèlent que les récepteurs des lymphocytes T transmettent des forces pN définies à leurs antigènes pour une fidélité améliorée. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 113, 5610 – 5615 (2016).
Tabdanov, E. et al. La microstructuration des ligands TCR et LFA-1 révèle des effets complémentaires sur la mécanique du cytosquelette dans les cellules T. Intégr. Biol. 7, 1272 – 1284 (2015).
Govendir, MA et al. Les forces cytosquelettiques des lymphocytes T façonnent la topographie des synapses pour une lyse ciblée via un biais de courbure membranaire de la perforine. Dev. Cellule 57, 2237-2247.e8 (2022).
Wang, MS et coll. Les intégrines mécaniquement actives ciblent la sécrétion lytique au niveau de la synapse immunitaire pour faciliter la cytotoxicité cellulaire. Nat. Commun. 13, 3222 (2022).
Liu, CSC et coll. À la pointe de la technologie : les mécanocapteurs Piezo1 optimisent l’activation des lymphocytes T humains. J. Immunol. 200, 1255 – 1260 (2018).
Jin, W. et coll. L’activation des lymphocytes T et l’organisation des synapses immunitaires répondent à la mécanique à l’échelle microscopique des surfaces structurées. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 116, 19835 – 19840 (2019).
Kumari, S. et coll. La tension cytosquelettique maintient activement le contact synaptique des lymphocytes T migrateurs. EMBO J. 39, e102783 (2020).
Huby, RDJ, Weiss, A. & Ley, SC Le nocodazole inhibe la transduction du signal par le récepteur de l'antigène des lymphocytes T. J. Biol. Chem. 273, 12024 – 12031 (1998).
Le Saux, G. et al. La mécanodétection à l'échelle nanométrique des cellules tueuses naturelles est révélée par des nanofils fonctionnalisés par des antigènes. Av. Mater. 31, 1805954 (2019).
Bhingardive, V. et al. Plateforme mécanostimulante basée sur des nanofils pour l'activation réglable des cellules tueuses naturelles. Av. Fonction. Mater. 31, 2103063 (2021).
Brumbaugh, KM et coll. Rôle fonctionnel de la tyrosine kinase Syk dans la cytotoxicité naturelle médiée par les cellules tueuses naturelles. J. Exp. Med. 186, 1965 – 1974 (1997).
Matalon, O. et coll. Le flux rétrograde d'actine contrôle la réponse des cellules tueuses naturelles en régulant l'état de conformation de SHP-1. EMBO J. 37, e96264 (2018).
Garrity, D., Call, ME, Feng, J. & Wucherpfennig, KW Le récepteur activateur NKG2D s'assemble dans la membrane avec deux dimères de signalisation dans une structure hexamérique. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 102, 7641 – 7646 (2005).
Friedman, D. et coll. La formation de synapses immunitaires des cellules tueuses naturelles et la cytotoxicité sont contrôlées par la tension de l'interface cible. J. Cell Sci. 134, jcs258570 (2021).
Yanamandra, AK et coll. La mécanodétection médiée par PIEZO1 régit l'efficacité de la destruction des cellules NK en 3D. Préimpression à https://doi.org/10.1101/2023.03.27.534435 (2023).
Wan, Z. et coll. L'activation des lymphocytes B est régulée par les propriétés de rigidité du substrat présentant les antigènes. J. Immunol. 190, 4661 – 4675 (2013).
Natkanski, E. et al. Les cellules B utilisent l’énergie mécanique pour discriminer les affinités antigéniques. Sciences 340, 1587 – 1590 (2013).
Merino-Cortés, SV et al. La diacylglycérol kinase ζ favorise le remodelage du cytosquelette d'actine et les forces mécaniques au niveau de la synapse immunitaire des cellules B. Sci. Signal. 13, eaaw8214 (2020).
Zeng, Y. et al. La rigidité du substrat régule l’activation, la prolifération, le changement de classe et les réponses anticorps indépendantes des lymphocytes T in vivo : réponse immunitaire cellulaire. EUR. J. Immunol. 45, 1621 – 1634 (2015).
Nowosad, CR, Spillane, KM & Tolar, P. Les cellules B du centre germinal reconnaissent l'antigène grâce à une architecture de synapse immunitaire spécialisée. Nat. Immunol. 17, 870 – 877 (2016).
Jiang, H. & Wang, S. Les cellules immunitaires utilisent des forces de traction actives pour distinguer l'affinité et accélérer l'évolution. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 120, e2213067120 (2023).
Stanton, RJ et coll. HCMV pUL135 remodèle le cytosquelette d'actine pour altérer la reconnaissance immunitaire des cellules infectées. Microbe hôte de cellule 16, 201 – 214 (2014).
Pai, RK, Convery, M., Hamilton, TA, Boom, WH & Harding, CV Inhibition de l'expression du transactivateur de classe II induite par l'IFN-γ par une lipoprotéine de 19 kDa de Mycobacterium tuberculosis: un mécanisme potentiel d’évasion immunitaire. J. Immunol. 171, 175 – 184 (2003).
Samassa, F. et al. Shigella altère la réactivité des lymphocytes T humains en détournant la dynamique du cytosquelette d'actine et le trafic vésiculaire des récepteurs des lymphocytes T. Cellule. Microbiol. 22, e13166 (2020).
Hanč, P. et al. Structure du complexe de F-actine et de DNGR-1, un récepteur de lectine de type C impliqué dans la présentation croisée des cellules dendritiques d'antigènes associés aux cellules mortes. Immunité 42, 839 – 849 (2015).
Homme, SM et al. La polymérisation de l'actine en tant que mécanisme effecteur immunitaire inné clé à contrôler des salmonelles l'infection. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 111, 17588 – 17593 (2014).
Jacobson, EC et coll. La migration à travers un petit pore perturbe l'organisation inactive de la chromatine dans les cellules de type neutrophile. BMC Biol. 16, 142 (2018).
Solis, AG et coll. La mécanosensation de la force cyclique par PIEZO1 est essentielle à l'immunité innée. Nature 573, 69 – 74 (2019).
Robledo-Avila, FH, Ruiz-Rosado, J., de, D., Brockman, KL & Partida-Sánchez, S. Le canal ionique TRPM2 régule les fonctions inflammatoires des neutrophiles pendant Listeria monocytogenes l'infection. De face. Immunol. 11, 97 (2020).
Meng, KP, Majedi, FS, Thauland, TJ & Butte, MJ Mecanosensing via YAP contrôle l'activation et le métabolisme des lymphocytes T. J. Exp. Med. 217, e20200053 (2020). Cette étude met en lumière le fait que les lymphocytes T détectent les signaux mécaniques de leur environnement et ajustent leur réponse en conséquence.
Al-Aghbar, MA, Jainarayanan, AK, Dustin, ML & Roffler, SR L'interaction entre la topologie membranaire et les forces mécaniques dans la régulation de l'activité des récepteurs des lymphocytes T. Commun.Biol. 5, 40 (2022).
Wong, VW et coll. La force mécanique prolonge l'inflammation aiguë via des voies dépendantes des lymphocytes T pendant la formation des cicatrices. FASEB J. 25, 4498 – 4510 (2011).
Chen, DS & Mellman, I. L'oncologie rencontre l'immunologie : le cycle cancer-immunité. Immunité 39, 1 – 10 (2013).
O'Donnell, JS, Teng, MWL et Smyth, MJ Immunoédition du cancer et résistance à l'immunothérapie à base de lymphocytes T. Nat. Rév. Clin. Oncol. 16, 151 – 167 (2019).
Dustin, ML & Long, EO Synapses immunologiques cytotoxiques : synapses NK et CTL. Immunol. Tour. 235, 24 – 34 (2010).
González-Granado, JM et al. L'enveloppe nucléaire lamin-A associe la dynamique de l'actine à l'architecture des synapses immunologiques et à l'activation des lymphocytes T. Sci. Signal. 7, ra37 (2014).
González, C. et al. La liaison de capture Nanobody-CD16 révèle la mécanosensibilité des cellules NK. Biophys. J. 116, 1516 – 1526 (2019).
Fan, J. et al. NKG2D discrimine divers ligands grâce à des changements conformationnels de ligands sélectivement mécano-régulés. EMBO J. 41, e107739 (2022).
Tsopoulidis, N. et al. La formation d’un réseau d’actine nucléaire déclenchée par le récepteur des lymphocytes T entraîne le CD4+ Fonctions effectrices des lymphocytes T. Sci. Immunol. 4, eaav1987 (2019).
Tamzalit, F. et al. Les saillies interfaciales d'actine améliorent mécaniquement la destruction par les cellules T cytotoxiques. Sci. Immunol. 4, eaav5445 (2019).
Sánchez, EE et al. La contraction apoptotique entraîne la libération des cellules cibles par les cellules T cytotoxiques. Nat. Immunol. https://doi.org/10.1038/s41590-023-01572-4 (2023).
Haendel, C. et al. Ramollissement de la membrane cellulaire dans les cellules cancéreuses du sein et du col de l’utérus. NJ Phys. 17, 083008 (2015).
Huang, B., Song, B. & Xu, C. Métabolisme du cholestérol dans le cancer : mécanismes et opportunités thérapeutiques. Nat. Métab. 2, 132 – 141 (2020).
Hanna, infirmière autorisée et coll. Les monocytes en patrouille contrôlent les métastases tumorales dans les poumons. Sciences 350, 985 – 990 (2015).
Vyas, M. et al. Les cellules tueuses naturelles suppriment les métastases cancéreuses en éliminant les cellules cancéreuses en circulation. De face. Immunol. 13, 1098445 (2023).
Hu, B., Xin, Y., Hu, G., Li, K. et Tan, Y. La contrainte de cisaillement des fluides améliore la cytotoxicité des cellules tueuses naturelles envers les cellules tumorales circulantes grâce à la mécanodétection médiée par NKG2D. APL Bioeng. 7, 036108 (2023).
Boussommier-Calleja, A. et al. Les effets des monocytes sur l'extravasation des cellules tumorales dans un modèle microfluidique vascularisé 3D. Biomatériaux 198, 180 – 193 (2019).
Soderquest, K. et al. Les monocytes contrôlent la différenciation des cellules tueuses naturelles en phénotypes effecteurs. sanguins 117, 4511 – 4518 (2011).
Kumar, BV, Connors, TJ & Farber, DL Développement, localisation et fonction des lymphocytes T humains tout au long de la vie. Immunité 48, 202 – 213 (2018).
Surcel, A. et al. Activation pharmacologique des paralogues de la myosine II pour corriger les défauts de la mécanique cellulaire. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 112, 1428 – 1433 (2015).
Mittelheisser, V. et coll. Propriétés physicochimiques optimales des conjugués anticorps-nanoparticules pour un meilleur ciblage des tumeurs. Av. Mater. 34, 2110305 (2022).
Guo, P. et coll. L'élasticité des nanoparticules dirige l'absorption par la tumeur. Nat. Commun. 9, 130 (2018).
Liang, Q. et coll. La douceur des microparticules dérivées des cellules tumorales régule leur efficacité d’administration de médicaments. Nat. Biomed. Ing. 3, 729 – 740 (2019).
Chen, X. et coll. Élimination spécifique médiée par les nanoparticules des cellules souches molles du cancer en ciblant la faible rigidité cellulaire. Acta Biomater. 135, 493 – 505 (2021).
Perez, JE et al. Raidissement cellulaire transitoire déclenché par l’exposition à des nanoparticules magnétiques. J. Nanobiotechnologie. 19, 117 (2021).
Liu, YX et coll. La mécanique unicellulaire constitue un moyen efficace pour sonder les interactions in vivo entre les macrophages alvéolaires et les nanoparticules d'argent. J.Phys. Chim. B 119, 15118 – 15129 (2015).
Binnewies, M. et al. Comprendre le microenvironnement immunitaire tumoral (TIME) pour une thérapie efficace. Nat. Med. 24, 541 – 550 (2018).
Hartmann, N. et coll. Rôle dominant du guidage par contact dans le piégeage intrastromal des lymphocytes T dans le cancer du pancréas humain. Clin. Cancer Rés. 20, 3422 – 3433 (2014).
Kuczek, DE et al. La densité du collagène régule l’activité des cellules T infiltrant les tumeurs. J. Immunautre. Cancer 7, 68 (2019).
Sun, X. et coll. La tumeur DDR1 favorise l’alignement des fibres de collagène pour déclencher l’exclusion immunitaire. Nature 599, 673 – 678 (2021).
Di Martino, JS et al. Une niche ECM riche en collagène de type III dérivée d'une tumeur régule la dormance des cellules tumorales. Nat. Un cancer 3, 90 – 107 (2021).
Lampi, MC & Reinhart-King, CA Cibler la rigidité de la matrice extracellulaire pour atténuer la maladie : des mécanismes moléculaires aux essais cliniques. Sci. Trad. Med. 10, eaao0475 (2018).
Diop-Frimpong, B., Chauhan, VP, Krane, S., Boucher, Y. & Jain, RK Losartan inhibe la synthèse du collagène I et améliore la distribution et l'efficacité des nanothérapeutiques dans les tumeurs. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 108, 2909 – 2914 (2011).
Liu, J. et coll. Le blocage du TGF-β améliore la distribution et l'efficacité des traitements contre le carcinome du sein en normalisant le stroma tumoral. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 109, 16618 – 16623 (2012).
Van Cutsem, E. et al. Essai randomisé de phase III sur la pegvorhyaluronidase alfa avec le nab-paclitaxel plus gemcitabine pour les patients atteints d'adénocarcinome pancréatique métastatique à haute teneur en hyaluronane. J.Clin. Oncol. 38, 3185 – 3194 (2020).
Provenzano, PP et coll. Le ciblage enzymatique du stroma élimine les barrières physiques au traitement de l'adénocarcinome canalaire pancréatique. Cancer Cell 21, 418 – 429 (2012).
Zhong, Y. et al. Nanoenzymes activables par le microenvironnement tumoral pour le remodelage mécanique de la matrice extracellulaire et une chimiothérapie tumorale améliorée. Av. Fonction. Mater. 31, 2007544 (2021).
Caruana, I. et coll. L'héparanase favorise l'infiltration tumorale et l'activité antitumorale des lymphocytes T redirigés vers CAR. Nat. Med. 21, 524 – 529 (2015).
Prescher, JA, Dube, DH et Bertozzi, CR Remodelage chimique des surfaces cellulaires chez les animaux vivants. Nature 430, 873 – 877 (2004).
Meng, D. et al. Cellules NK activées in situ en tant que nanoporteurs de cellules vivantes ciblées bioorthogonales et immunothérapie des tumeurs solides augmentée. Av. Fonction. Mater. 32, 2202603 (2022).
Zhao, Y. et al. Bioorthogonal équipant les cellules CAR-T de hyaluronidase et d’anticorps bloquant les points de contrôle pour une immunothérapie améliorée des tumeurs solides. ACS Cent. Sci. 8, 603 – 614 (2022).
Saatci, O. et coll. Le ciblage de la lysyl oxydase (LOX) permet de vaincre la résistance à la chimiothérapie dans le cancer du sein triple négatif. Nat. Commun. 11, 2416 (2020).
Nicolas-Boluda, A. et al. La réversion du raidissement de la tumeur grâce à l'inhibition de la réticulation du collagène améliore la migration des lymphocytes T et le traitement anti-PD-1. eLife 10, e58688 (2021).
De Vita, A. et coll. La Lysyl oxydase a conçu des nanovésicules lipidiques pour le traitement du cancer du sein triple négatif. Sci. représentant 11, 5107 (2021).
Kim, HY et coll. Détection de l'activité de la lysyl oxydase dans la matrice extracellulaire tumorale à l'aide de nanosondes d'or fonctionnalisées par des peptides. Cancers 13, 4523 (2021).
Kanapathipillai, M. et al. Inhibition de la croissance des tumeurs mammaires à l'aide de nanoparticules ciblant la lysyl oxydase pour modifier la matrice extracellulaire. Nano Lett. 12, 3213 – 3217 (2012).
Vennin, C. et al. L’amorçage transitoire des tissus via l’inhibition de ROCK dissocie la progression du cancer du pancréas, la sensibilité à la chimiothérapie et les métastases. Sci. Trad. Med. 9, eaai8504 (2017). Une démonstration convaincante du fait que la modification des caractéristiques mécaniques de l’environnement tumoral présente un grand potentiel pour améliorer les thérapies.
Murphy, KJ et coll. La technologie d’imagerie intravitale guide l’amorçage médié par FAK dans la médecine de précision du cancer du pancréas en fonction du statut de Merlin. Sci. Av. 7, eabh0363 (2021).
Tran, E. et coll. Le ciblage immunitaire de la protéine d’activation des fibroblastes déclenche la reconnaissance des cellules stromales multipotentes de la moelle osseuse et de la cachexie. J. Exp. Med. 210, 1125 – 1135 (2013).
Wang, L.-CS et al. Le ciblage de la protéine d’activation des fibroblastes dans le stroma tumoral avec des lymphocytes T récepteurs d’antigènes chimériques peut inhiber la croissance tumorale et augmenter l’immunité de l’hôte sans toxicité grave. Immunol contre le cancer. Rés. 2, 154 – 166 (2014).
Rurik, JG et coll. Cellules CAR T produites in vivo pour traiter les lésions cardiaques. Sciences 375, 91 – 96 (2022).
Correia, AL et al. Les cellules étoilées hépatiques suppriment la dormance du cancer du sein entretenue par les cellules NK. Nature 594, 566 – 571 (2021).
Roberts, EW et coll. L'épuisement des cellules stromales exprimant la protéine α d'activation des fibroblastes du muscle squelettique et de la moelle osseuse entraîne une cachexie et une anémie. J. Exp. Med. 210, 1137 – 1151 (2013).
Fujimori, K., Covell, DG, Fletcher, JE & Weinstein, JN Analyse de modélisation de la distribution globale et microscopique des immunoglobulines G, F(ab')2 et Fab dans les tumeurs. Cancer Res. 49, 5656 – 5663 (1989).
Tabdanov, ED et al. Ingénierie des cellules T pour améliorer la migration 3D à travers des microenvironnements tumoraux structurellement et mécaniquement complexes. Nat. Commun. 12, 2815 (2021).
Whitlock, B. Améliorer la destruction des cellules T cytotoxiques par l'épuisement du PTEN (Weill Cornell Médecine, 2018).
Li, R., Ma, C., Cai, H. et Chen, W. La mécanoimmunologie des cellules CAR T en un coup d'œil. Av. Sci. 7, 2002628 (2020).
Chockley, P. J., Ibanez-Vega, J., Krenciute, G., Talbot, L. J. et Gottschalk, S. Les CAR synapses améliorent l'activité anti-tumorale des cellules immunitaires. Nat. Biotechnologie. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01650-2 (2023). Cette étude montre que l’amélioration de l’architecture synapse immunologique des cellules CAR-NK conduit à une efficacité thérapeutique supérieure.
Roybal, KT et al. Reconnaissance précise des tumeurs par les lymphocytes T avec des circuits combinatoires de détection d'antigènes. Cellule 164, 770 – 779 (2016).
Gordon, WR et coll. Allostérie mécanique : preuve d'une exigence de force dans l'activation protéolytique de l'encoche. Dev. Cellule 33, 729 – 736 (2015).
Sloas, DC, Tran, JC, Marzilli, AM & Ngo, JT Récepteurs accordés en tension pour la mécanotransduction synthétique et la détection de la force intercellulaire. Nat. Biotechnologie. https://doi.org/10.1038/s41587-022-01638-y (2023).
Mittelheisser, V. et coll. Tirer parti de l’immunothérapie avec la nanomédecine. Adv. Ther. 3, 2000134 (2020).
Perica, K. et al. Le regroupement des récepteurs des lymphocytes T induits par un champ magnétique par des nanoparticules améliore l'activation des lymphocytes T et stimule l'activité antitumorale. ACS Nano 8, 2252 – 2260 (2014).
Majedi, FS et coll. Augmentation de l’activation des lymphocytes T par les forces oscillatoires et les cellules génétiquement modifiées présentatrices d’antigènes. Nano Lett. 19, 6945 – 6954 (2019).
Vis, B. et coll. Les nanoparticules de silice ultrapetites ligaturent directement le complexe récepteur des lymphocytes T. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 117, 285 – 291 (2020).
Kim, K.-S. et coll. Activation des cellules tueuses naturelles par les nanoparticules cationiques pour une immunothérapie efficace contre le cancer. Application ACS. Maître. Interfaces 12, 56731 – 56740 (2020).
Sim, T. et coll. Magnéto-activation et imagerie par résonance magnétique de cellules tueuses naturelles marquées avec des nanocomplexes magnétiques pour le traitement des tumeurs solides. ACS Nano 15, 12780 – 12793 (2021).
Liu, Z. et coll. Actionneurs optomécaniques à l'échelle nanométrique pour contrôler la mécanotransduction dans les cellules vivantes. Nat. Les méthodes 13, 143 – 146 (2016).
Farhadi, A., Ho, GH, Sawyer, DP, Bourdeau, RW et Shapiro, MG Imagerie échographique de l'expression des gènes dans les cellules de mammifères. Sciences 365, 1469 – 1475 (2019).
Wang, X., Chen, X. et Yang, Y. Contrôle spatio-temporel de l'expression des gènes par un système transgénique commutable par la lumière. Nat. Les méthodes 9, 266 – 269 (2012).
Pan, Y. et al. Mécanogénétique pour le contrôle à distance et non invasif de l'immunothérapie du cancer. Proc. Natl Acad. Sci. Etats-Unis 115, 992 – 997 (2018).
González-Bermúdez, B., Guinée, GV & Plaza, GR Avancées dans l'aspiration par micropipette : applications en biomécanique cellulaire, modèles et études approfondies. Biophys. J. 116, 587 – 594 (2019).
Otto, O. et coll. Cytométrie de déformabilité en temps réel : phénotypage mécanique cellulaire à la volée. Nat. Les méthodes 12, 199 – 202 (2015). Introduction de la technologie RT-DC de pointe et à haut débit pour mesurer les propriétés mécaniques des cellules.
Gerum, R. et coll. Propriétés viscoélastiques des cellules en suspension mesurées par cytométrie de déformation en flux de cisaillement. eLife 11, e78823 (2022).
Sánchez-Iranzo, H., Bevilacqua, C., Diz-Muñoz, A. & Prevedel, R. Un ensemble de données de microscopie Brillouin 3D de l'œil du poisson zèbre in vivo. Mémoire de données. 30, 105427 (2020).
Conrad, C., Gray, KM, Stroka, KM, Rizvi, I. & Scarcelli, G. Caractérisation mécanique des nodules 3D du cancer de l'ovaire par microscopie confocale Brillouin. Cellule. Mol. Bioeng. 12, 215 – 226 (2019).
Wu, P.-H. et coll. Microrhéologie de suivi des particules des cellules cancéreuses chez des sujets vivants. Mater. Aujourd'hui 39, 98 – 109 (2020).
Falchuk, K. & Berliner, R. Pressions hydrostatiques dans les capillaires péritubulaires et les tubules du rein du rat. Un m. J. Physiol. 220, 1422 – 1426 (1971).
Petrie, RJ & Koo, H. Mesure directe de la pression intracellulaire. Curr. Protocole. Biol cellulaire. 63, (2014).
Harlepp, S., Thalmann, F., Follain, G. & Goetz, JG Les forces hémodynamiques peuvent être mesurées avec précision in vivo avec une pince optique. Mol. Biol. Cellule 28, 3252 – 3260 (2017).
Mongera, A. et al. Une transition de blocage fluide-solide est à l'origine de l'élongation de l'axe du corps vertébré. Nature 561, 401 – 405 (2018).
Mongera, A. et al. Mécanique du microenvironnement cellulaire sondée par les cellules in vivo lors de la différenciation du mésoderme présomitique du poisson zèbre. Nat. Maître. 22, 135 – 143 (2023).
Vorselen, D. et al. La microscopie à force de traction des microparticules révèle des modèles d’effort de force subcellulaire dans les interactions cellule immunitaire-cible. Nat. Commun. 11, 20 (2020).
Meng, F., Suchyna, TM & Sachs, F. Un capteur de contrainte mécanique basé sur le transfert d'énergie par fluorescence pour des protéines spécifiques in situ : capteur de contrainte mécanique. FEB J. 275, 3072 – 3087 (2008).
Grashoff, C. et coll. La mesure de la tension mécanique à travers la vinculine révèle une régulation de la dynamique de l’adhésion focale. Nature 466, 263 – 266 (2010).
Conway, DE et coll. La contrainte de cisaillement fluide sur les cellules endothéliales module la tension mécanique entre la VE-cadhérine et la PECAM-1. Curr. Biol. 23, 1024 – 1030 (2013).
Pan, X. et coll. Évaluation de la migration des cellules cancéreuses à l’aide d’une sonde fluorescente sensible à la viscosité. Chim. Commun. 58, 4663 – 4666 (2022).
Shimolina, LE et coll. Imagerie de la viscosité microscopique d'une tumeur in vivo à l'aide de rotors moléculaires. Sci. représentant 7, 41097 (2017).
Sack, I. Élastographie par résonance magnétique, de la mécanique fondamentale des tissus mous à l'imagerie diagnostique. Nat. Rév. Phys. 5, 25 – 42 (2022).
Soteriou, D. et al. Phénotypage physique unicellulaire rapide de biopsies tissulaires mécaniquement dissociées. Nat. Biomed. Ing. https://doi.org/10.1038/s41551-023-01015-3 (2023).
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